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拟南芥CTP蛋白酶家族功能机制研究

中文摘要第4-5页
Abstract第5页
第一章 文献综述第11-18页
    1. 叶绿体结构及功能第11-13页
    2. PSⅡ蛋白复合体是光合系统的重要元件第13-14页
    3. D1是PSⅡ蛋白复合体中的核心成分第14-15页
    4. CTP是D1蛋白成熟的关键酶第15-16页
    5. 本课题研究意义及获得的结果第16-18页
第二章 载体构建第18-34页
    1. 材料与主要试剂第18-19页
        1.1 实验材料第18页
        1.2 主要试剂与仪器第18-19页
    2. 实验方法第19-31页
        2.1 目的DNA片段制备第19-26页
            2.1.1 目的DNA片段说明第19-20页
            2.1.2 目的DNA片段模板制备第20-22页
            2.1.3 引物设计第22-23页
            2.1.4 目的DNA片段的克隆第23-25页
            2.1.5 目的DNA片段纯化第25-26页
        2.2 母体载体制备第26-28页
            2.2.1 母体载体说明第26-27页
            2.2.2 母体载体提取第27-28页
        2.3 限制性酶切分析第28-29页
        2.4 外源DNA片段与母体载体的连接第29页
        2.5 连接产物转大肠杆菌感受态细胞第29-30页
            2.5.1 DH5α感受态细胞制备第29-30页
            2.5.2 连接产物转化感受态细胞第30页
        2.6 重组质粒的验证第30-31页
            2.6.1 转化实验验证第30页
            2.6.2 酶切验证第30-31页
            2.6.3 测序验证第31页
    3. 结果与讨论第31-34页
        3.1 植物总RNA提取评估分析第31页
        3.2 DNA片段回收纯度及浓度检测评估第31-32页
        3.3 重组质粒的筛选及验证第32-33页
        3.4 小结第33-34页
第三章 体外CTP酶活检测第34-50页
    1. 材料与主要试剂第34-35页
        1.1 实验材料第34页
        1.2 主要试剂与仪器第34-35页
    2. 实验方法第35-41页
        2.1 蛋白诱导表达及提取第35-37页
            2.1.1 BL-21感受态细胞制备第35页
            2.1.2 重组质粒对BL-21的转化第35页
            2.1.3 GST融合蛋白诱导表达第35-36页
            2.1.4 GST融合蛋白提取及纯化第36页
            2.1.5 目的蛋白提取第36-37页
            2.1.6 蛋白浓度测定第37页
        2.2 9aa抗体制备第37-40页
            2.2.1 免疫抗原设计第37页
            2.2.2 兔免疫抗体制备第37-38页
            2.2.3 免疫血清抗性验证第38-39页
            2.2.4 9aa特异性抗体的抗体第39-40页
            2.2.5 叶绿体的粗提第40页
        2.3 CTP体外酶活检测第40-41页
            2.3.1 酶活检测模型第40-41页
            2.3.2 酶活检测实验第41页
    3. 实验结果与讨论第41-50页
        3.1 实验蛋白提取结果讨论第41-44页
        3.2 免疫血清验证第44-45页
        3.3 9aa抗体纯度检测与分析第45-47页
        3.4 D1抗体纯度检测与分析第47页
        3.5 体外CTP酶活检测结果讨论第47-50页
第四章 植物突变体分析第50-67页
    1. 材料及主要试剂第50页
        1.1 实验材料第50页
        1.2 主要试剂及仪器第50页
    2. 实验方法第50-53页
        2.1 CtpA/B/C蛋白抗体制备第50-51页
        2.2 植物突变体分析第51-53页
            2.2.1 植物突变体汇总第51-52页
            2.2.2 植物突变体DNA水平鉴定原理第52页
            2.2.3 植物突变体RNA水平鉴定原理第52-53页
            2.2.4 植物突变体蛋白水平鉴定原理第53页
    3. 实验结果与讨论第53-67页
        3.1 CtpA/B/C蛋白抗体免疫分析第53-56页
        3.2 缺失突变体4g-1和5g-1培养结果讨论第56-58页
        3.3 突变体4g-1DNA、RNA及蛋白水平分析第58页
        3.4 突变体4g-2DNA、RNA及蛋白水平分析第58-59页
        3.5 突变体3g-1DNA、RNA及蛋白水平分析第59-61页
        3.6 突变体5g-1DNA、RNA及蛋白水平分析第61-62页
        3.7 突变体5g-2DNA、RNA及蛋白水平分析第62-64页
        3.8 CtpA蛋白缺失突变体背景下,CtpB和CtpC蛋白表达量分析第64-65页
        3.9 CtpC蛋白缺失突变体背景下,CtpA和CtpB蛋白表达量分析第65页
        3.10 CtpC蛋白缺失突变体背景下,D1蛋白周转分析第65-66页
        3.11 小结第66-67页
第五章 转基因实验第67-72页
    1. 材料与主要试剂第67页
        1.1 实验材料第67页
        1.2 主要实验与仪器第67页
    2. 实验方法第67-69页
        2.1 GV3101农杆菌感受态制备第67-68页
        2.2 GV3101农杆菌转化第68页
        2.3 农杆菌侵染拟南芥第68页
        2.4 转基因植物抗性筛选第68-69页
        2.5 转基因植物DNA水平鉴定原理第69页
    3. 结果与讨论第69-72页
        3.1 转基因实验讨论第69-70页
        3.2 转基因植物抗性筛选结果讨论第70页
        3.3 转基因植物DNA水平分析第70-71页
        3.4 小结第71-72页
结论第72-75页
参考文献第75-80页
附表1:溶液配方第80-83页
攻读硕士学位期间取得的学术成果第83-84页
致谢第84页

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