| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 1 引言 | 第12-27页 |
| ·藜麦资源状况 | 第12-20页 |
| ·藜麦主要营养成分 | 第12-19页 |
| ·藜麦的临床试验研究现状 | 第19-20页 |
| ·黄酮的抗氧化生理活性 | 第20-22页 |
| ·衰老理论 | 第22-25页 |
| ·随机损伤衰老理论 | 第22页 |
| ·自由基衰老理论 | 第22-24页 |
| ·基因衰老理论 | 第24-25页 |
| ·线粒体退化衰老理论 | 第25页 |
| ·研究方案 | 第25-27页 |
| ·技术路线图 | 第25页 |
| ·研究内容和意义 | 第25-27页 |
| 2 藜麦黄酮提取及大孔树脂纯化工艺研究 | 第27-43页 |
| ·实验材料和设备 | 第27-28页 |
| ·实验材料和试剂 | 第27页 |
| ·实验仪器和设备 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-32页 |
| ·操作步骤和检测方法 | 第28-29页 |
| ·提取单因素实验 | 第29页 |
| ·提取正交实验设计 | 第29-30页 |
| ·盐析浓缩除可溶蛋白 | 第30页 |
| ·大孔树脂纯化工艺研究 | 第30-31页 |
| ·D101大孔树脂单因素实验 | 第31-32页 |
| ·正交实验设计 | 第32页 |
| ·数据处理方法 | 第32页 |
| ·实验结果与分析 | 第32-42页 |
| ·提取单因素实验 | 第32-35页 |
| ·正交实验结果 | 第35-36页 |
| ·浓缩盐析除可溶蛋白与黄酮回收率 | 第36-37页 |
| ·大孔树脂的选择 | 第37-38页 |
| ·D101大孔树脂单因素实验 | 第38-40页 |
| ·多因素吸附正交实验 | 第40页 |
| ·饱和吸附量测定 | 第40-41页 |
| ·洗脱体积与浓度 | 第41-42页 |
| ·小结与讨论 | 第42-43页 |
| 3 葡聚糖凝胶Sephadex LH-20分离纯化藜麦黄酮研究 | 第43-55页 |
| ·实验材料和设备 | 第43-44页 |
| ·实验材料和试剂 | 第43页 |
| ·实验仪器和设备 | 第43-44页 |
| ·实验方法 | 第44-45页 |
| ·分离样本和流动相的前处理 | 第44页 |
| ·葡聚糖凝胶Sephadex LH-20预处理 | 第44页 |
| ·葡聚糖凝胶Sephadex LH-20纯化工艺条件 | 第44-45页 |
| ·葡聚糖凝胶Sephadex LH-20再生处理 | 第45页 |
| ·高效液相色谱及红外测定 | 第45页 |
| ·实验结果与分析 | 第45-53页 |
| ·方法Ⅰ Sephadex LH-20葡聚糖凝胶柱纯化 | 第45-46页 |
| ·方法Ⅰ HPLC检测结果 | 第46-47页 |
| ·方法Ⅱ Sephadex LH-20葡聚糖凝胶柱纯化 | 第47-48页 |
| ·方法Ⅱ HPLC检测结果 | 第48-50页 |
| ·全波长扫描 | 第50-53页 |
| ·红外分析 | 第53页 |
| ·小结与讨论 | 第53-55页 |
| 4 藜麦黄酮体外抗氧化测定 | 第55-63页 |
| ·实验材料和设备 | 第55-56页 |
| ·实验材料和试剂 | 第55-56页 |
| ·实验仪器和设备 | 第56页 |
| ·实验方法 | 第56-57页 |
| ·对DPPH自由基清除作用 | 第56页 |
| ·对H_2O_2的清除作用 | 第56页 |
| ·对金属离子的螯合作用 | 第56-57页 |
| ·.OH自由基的清除作用 | 第57页 |
| ·数据处理方法 | 第57页 |
| ·实验结果与分析 | 第57-61页 |
| ·对DPPH自由基清除作用 | 第57-58页 |
| ·对H_2O_2的清除作用 | 第58-59页 |
| ·对金属离子的螯合作用 | 第59-60页 |
| ·.OH自由基的清除作用 | 第60-61页 |
| ·小结与讨论 | 第61-63页 |
| 5 藜麦黄酮对果蝇寿命及体内抗氧化酶的影响 | 第63-75页 |
| ·实验材料和设备 | 第63-64页 |
| ·实验材料和试剂 | 第63-64页 |
| ·实验仪器和设备 | 第64页 |
| ·实验方法 | 第64-66页 |
| ·果蝇培养基的配置 | 第64页 |
| ·果蝇培养与分离 | 第64-65页 |
| ·藜麦黄酮对果蝇寿命的影响 | 第65页 |
| ·藜麦黄酮对果蝇体重的影响 | 第65页 |
| ·藜麦黄酮对果蝇总SOD、MnSOD、CuZnSOD、CAT酶活力的影响 | 第65-66页 |
| ·数据处理方法 | 第66页 |
| ·实验结果与分析 | 第66-72页 |
| ·藜麦总黄酮对果蝇平均、半死亡和最长寿命的影响 | 第66-68页 |
| ·不同浓度添加藜麦黄酮果蝇生长曲线 | 第68-69页 |
| ·不同浓度藜麦黄酮对果蝇体重影响 | 第69-70页 |
| ·藜麦黄酮对果蝇组织总SOD、MnSOD、CuZnSOD、CAT活力的影响 | 第70-72页 |
| ·小结与讨论 | 第72-75页 |
| 6 荧光定量PCR检测果蝇相关基因的表达 | 第75-85页 |
| ·实验材料和设备 | 第75-76页 |
| ·实验材料和试剂 | 第75页 |
| ·实验仪器和设备 | 第75-76页 |
| ·实验方法 | 第76-78页 |
| ·果蝇培养基配方 | 第76页 |
| ·总RNA提取 | 第76-77页 |
| ·反转录合成cDNA | 第77页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第77-78页 |
| ·数据处理方法 | 第78页 |
| ·实验结果与分析 | 第78-83页 |
| ·RNA完整和纯度检测 | 第78-79页 |
| ·藜麦黄酮对雄果蝇CuZnSOD、MnSOD、CAT、S6K、MTH、MAPK、Egfr基因相对表达量的影响 | 第79-83页 |
| ·小结与讨论 | 第83-85页 |
| 7 结论与展望 | 第85-87页 |
| ·结论 | 第85-86页 |
| ·展望 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-95页 |
| 个人简介 | 第95-96页 |
| 导师简介 | 第96-97页 |
| 获得成果目录清单 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98页 |
