| 中英文缩略词对照表 | 第1-5页 |
| 摘要 | 第5-10页 |
| ABSTRACT | 第10-21页 |
| 综述 | 第21-31页 |
| 1. FGF21概述 | 第21-22页 |
| 2. FGF21的生理作用 | 第22-25页 |
| ·FGF21：表达和调节 | 第22-23页 |
| ·FGF21和糖代谢 | 第23-24页 |
| ·FGF21和脂类代谢 | 第24-25页 |
| 3. FGF21与疾病的关系 | 第25-27页 |
| ·FGF21与肥胖和2型糖尿病 | 第25-26页 |
| ·FGF21与其他与胰岛素抵抗相关的疾病 | 第26-27页 |
| 4. 小结 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-31页 |
| 第一部分 FGF21对糖尿病鼠的快速降糖作用 | 第31-47页 |
| 前言 | 第31-32页 |
| 材料与方法 | 第32-36页 |
| 1. 仪器与设备 | 第32页 |
| 2. 材料与试剂 | 第32-33页 |
| ·实验试剂来源 | 第32页 |
| ·实验试剂配置 | 第32页 |
| ·溶媒对照 | 第32-33页 |
| ·实验动物、设施及饲养管理 | 第33页 |
| ·动物分组及及剂量设置 | 第33页 |
| 3. 实验方法 | 第33-35页 |
| ·血糖监测 | 第33页 |
| ·葡萄糖耐量测定 | 第33-34页 |
| ·胰岛素耐量(释放)测定 | 第34页 |
| ·血清胰岛素含量及胰岛素抵抗指数 | 第34-35页 |
| 4. 统计学分析 | 第35-36页 |
| 实验结果 | 第36-46页 |
| 1. FGF21对T2D小鼠多日连续给药后的降糖作用 | 第36-38页 |
| 2. FGF21增加T2D小鼠对胰岛素的敏感性 | 第38-40页 |
| 3. FGF21降低T2D小鼠血清胰岛素含量及胰岛素抵抗(IR) | 第40-43页 |
| 4. FGF21对T2D鼠的快速降血糖作用 | 第43-44页 |
| 5. FGF21对模拟应激性高血糖的快速降糖作用 | 第44-46页 |
| 讨论 | 第46-47页 |
| 第二部分 FGF21的血循环和脑内水平的比较 | 第47-59页 |
| 前言 | 第47-48页 |
| 材料与方法 | 第48-53页 |
| 1. 仪器与设备 | 第48页 |
| 2. 材料与试剂 | 第48-49页 |
| ·实验试剂来源于配置 | 第48-49页 |
| ·实验试剂配置 | 第49页 |
| ·实验动物、设施及饲养管理 | 第49页 |
| 3. 实验方法 | 第49-52页 |
| ·实验动物选择依据 | 第49-50页 |
| ·动物分组 | 第50页 |
| ·小鼠血清的留取 | 第50页 |
| ·小鼠脑组织的留取 | 第50页 |
| ·脑组织蛋白的提取 | 第50-51页 |
| ·蛋白质印记法(Western Blot)分析 | 第51页 |
| ·酶联免疫吸附实验(Elisa) | 第51-52页 |
| 4. 统计学分析 | 第52-53页 |
| 实验结果 | 第53-58页 |
| 1. FGF21分别在T2D鼠和ND鼠的血液和大脑中的表达 | 第53-54页 |
| 2. 脑细胞FGF21的表达和FGF21受体激活 | 第54-58页 |
| 讨论 | 第58-59页 |
| 第三部分 FGF21对脑内皮细胞的作用 | 第59-83页 |
| 前言 | 第59-60页 |
| 材料与方法 | 第60-67页 |
| 1. 仪器与设备 | 第60页 |
| 2. 材料与试剂 | 第60-62页 |
| ·实验试剂来源于配置 | 第60-61页 |
| ·实验试剂配置 | 第61-62页 |
| 3. 实验方法 | 第62-66页 |
| ·人脑微血管内皮细胞(Human Brain Microvascular Endothelial Cell,HBMEC)的细胞培养 | 第62-63页 |
| ·小鼠脑微血管内皮细胞(Mouse Brain Microvascular Endothelial Cell,MBMEC)的细胞培养 | 第63页 |
| ·氧糖剥夺(Oxygen Glucose Depriviation,OGD) | 第63-64页 |
| ·转染siRNA | 第64页 |
| ·提取细胞蛋白 | 第64页 |
| ·提取细胞膜蛋白 | 第64页 |
| ·提取细胞核蛋白 | 第64-65页 |
| ·Western Blot | 第65页 |
| ·免疫荧光 | 第65页 |
| ·3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐(MTT)测试 | 第65页 |
| ·内皮细胞渗透性检测 | 第65-66页 |
| 4. 统计学分析 | 第66-67页 |
| 实验结果 | 第67-81页 |
| 1. FGF21在脑内皮细胞的表达 | 第67-69页 |
| 2. FGF21对脑内皮细胞的受体激活 | 第69-71页 |
| 3. FGF21在脑内皮细胞上的受体复合物形式 | 第71-72页 |
| 4. FGF21对脑内皮细胞的保护作用 | 第72-75页 |
| 5. FGF21对脑内皮细胞保护作用的作用机制 | 第75-81页 |
| 讨论 | 第81-83页 |
| 第四部分 FGF21对神经元细胞的作用 | 第83-100页 |
| 前言 | 第83-84页 |
| 材料与方法 | 第84-91页 |
| 1. 仪器与设备 | 第84页 |
| 2. 材料与试剂 | 第84-86页 |
| ·实验试剂来源于配置 | 第84-85页 |
| ·实验试剂配置 | 第85-86页 |
| 3. 实验方法 | 第86-90页 |
| ·神经元细胞的培养 | 第86-87页 |
| ·细胞缺氧损伤(Hypoxia) | 第87页 |
| ·神经元细胞高糖损伤(Hyperglycemia,HG) | 第87页 |
| ·提取细胞蛋白 | 第87-88页 |
| ·Western Blot | 第88页 |
| ·免疫荧光 | 第88页 |
| ·RNA提取 | 第88页 |
| ·反转录 | 第88-89页 |
| ·逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第89页 |
| ·乳酸脱氢酶(LDH)的测定 | 第89-90页 |
| ·免疫共沉淀(Co-IP)的试验方法 | 第90页 |
| 4. 统计学分析 | 第90-91页 |
| 实验结果 | 第91-99页 |
| 1. FGF21在神经元细胞中的表达 | 第91-92页 |
| 2. FGF21在神经元细胞中的受体激活 | 第92-94页 |
| 3. FGF21在神经元细胞上的受体复合物形式 | 第94-96页 |
| 4. FGF21对神经元细胞的保护作用 | 第96-97页 |
| 5. FGF21在神经元细胞的传导通路 | 第97-99页 |
| 讨论 | 第99-100页 |
| 结语 | 第100-102页 |
| 参考文献 | 第102-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
| 攻读博士学位期间已发表及待发表的学术论文目录 | 第114-116页 |
