细胞受控组装人工喉软骨支架与PLGA支架修复脊髓损伤动物实验研究
| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-19页 |
| ·组织工程与支架制备方法 | 第10-13页 |
| ·组织工程概述 | 第10-12页 |
| ·组织工程支架制备方法 | 第12-13页 |
| ·增材制造技术 | 第13-16页 |
| ·细胞直接受控组装技术 | 第14-15页 |
| ·低温沉积成形技术（LDM) | 第15-16页 |
| ·喉软骨损伤修复的国内外研究现状 | 第16页 |
| ·本文的意义和主要研究内容 | 第16-19页 |
| ·本文的意义 | 第16-17页 |
| ·本文的主要研究内容 | 第17-19页 |
| 第2章 喉软骨支架材料的遴选 | 第19-26页 |
| ·喉软骨组成 | 第19页 |
| ·组织工程支架材料要求 | 第19-20页 |
| ·可选软骨组织工程支架材料 | 第20-23页 |
| ·天然高分子材料 | 第20-21页 |
| ·人工合成高分子材料 | 第21-22页 |
| ·复合材料 | 第22-23页 |
| ·明胶-海藻酸钠材料分析 | 第23-25页 |
| ·海藻酸盐的结构与组成 | 第23-24页 |
| ·明胶的结构与组成 | 第24页 |
| ·明胶-海藻酸钠复合材料分析 | 第24-25页 |
| ·支架材料的确定 | 第25-26页 |
| 第3章 明胶-海藻酸钠支架制备及表征 | 第26-39页 |
| ·CCA-Ⅱ型细胞受控组装机 | 第26-27页 |
| ·支架制备过程及各参数的设定 | 第27-31页 |
| ·三维建模与分层 | 第27-28页 |
| ·工艺参数的设定 | 第28-29页 |
| ·明胶-海藻酸钠浓度比例配制 | 第29-31页 |
| ·无菌明胶-海藻酸钠支架制取 | 第31-33页 |
| ·材料配制及灭菌 | 第31页 |
| ·设备及器材灭菌处理 | 第31页 |
| ·三维模型导入及设定参数 | 第31页 |
| ·支架制取及固化 | 第31-33页 |
| ·支架性能表征 | 第33-37页 |
| ·不同明胶浓度材料粘度值测定 | 第33-34页 |
| ·支架降解性的测定 | 第34-35页 |
| ·支架孔隙率的测定 | 第35-36页 |
| ·支架含水率的测定 | 第36-37页 |
| ·支架膨胀率的测定 | 第37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第4章 软骨细胞的提取与培养 | 第39-45页 |
| ·实验原理与方法 | 第39-41页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·兔软骨细胞的提取 | 第39-40页 |
| ·软骨细胞的培养与传代 | 第40-41页 |
| ·软骨细胞甲苯胺蓝染色 | 第41-42页 |
| ·甲苯胺蓝鉴定原理 | 第41页 |
| ·溶液配制 | 第41页 |
| ·染色步骤 | 第41-42页 |
| ·结果 | 第42-43页 |
| ·细胞形态学观察 | 第42页 |
| ·甲苯胺蓝染色观察 | 第42-43页 |
| ·讨论 | 第43-45页 |
| 第5章 PLGA 支架修复脊髓损伤动物实验 | 第45-58页 |
| ·实验背景与原理 | 第45-47页 |
| ·PLGA支架制取 | 第45-46页 |
| ·PLGA 支架的体外细胞培养 | 第46-47页 |
| ·实验材料与方法 | 第47-49页 |
| ·实验材料 | 第47-48页 |
| ·实验方法 | 第48-49页 |
| ·修复效果评估 | 第49页 |
| ·BBB 评分 | 第49页 |
| ·组织切片及染色 | 第49页 |
| ·结果及结论 | 第49-58页 |
| ·BBB 的记录 | 第50页 |
| ·组织切片的染色结果对比 | 第50-58页 |
| 第6章 总结与展望 | 第58-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 附录 | 第67页 |
