| 摘要 | 第1-13页 |
| ABSTRACT | 第13-17页 |
| 符号说明 | 第17-19页 |
| 第一章 前言 | 第19-33页 |
| 1 Heparosan及其衍生物 | 第19-29页 |
| ·heparosan合酶 | 第20-23页 |
| ·heparosan的生产 | 第23-24页 |
| ·heparosan及其衍生物的作用 | 第24-29页 |
| 2 肝素的抗感染作用 | 第29-31页 |
| 3 本课题的研究目的及意义 | 第31-32页 |
| 4 本课题的主要研究内容 | 第32-33页 |
| 第二章 Heparosan的提取与分离 | 第33-47页 |
| 1 材料 | 第33-34页 |
| ·菌株 | 第33页 |
| ·主要仪器 | 第33页 |
| ·主要试剂 | 第33-34页 |
| ·培养基 | 第34页 |
| 2 方法 | 第34-38页 |
| ·菌株保藏 | 第34页 |
| ·种子培养 | 第34页 |
| ·发酵培养 | 第34页 |
| ·heparosan的纯化 | 第34-35页 |
| ·heparosan的鉴定 | 第35页 |
| ·heparosan纯度测定 | 第35-37页 |
| ·heparosan分子量的测定 | 第37页 |
| ·不同因素对heparosan产量及纯度的影响 | 第37-38页 |
| 3 结果 | 第38-46页 |
| ·heparosan的鉴定 | 第38-39页 |
| ·heparosan的纯度测定 | 第39-41页 |
| ·heparosan的分子量 | 第41页 |
| ·不同条件对heparosan产量及纯度的影响 | 第41-46页 |
| 4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 Heparosan及几种多糖对肠道菌群黏附及菌膜形成的影响 | 第47-64页 |
| 1 材料 | 第47-48页 |
| ·主要仪器 | 第47页 |
| ·主要试剂 | 第47-48页 |
| ·菌株及细胞株 | 第48页 |
| ·培养基 | 第48页 |
| 2 方法 | 第48-50页 |
| ·菌株培养 | 第49页 |
| ·肠道上皮细胞黏附实验 | 第49页 |
| ·黏液层黏附实验 | 第49-50页 |
| ·菌膜形成实验 | 第50页 |
| ·统计分析 | 第50页 |
| 3 结果 | 第50-60页 |
| ·对肠道菌黏附上皮细胞的影响 | 第50-55页 |
| ·对肠道菌黏附黏膜层的影响 | 第55-59页 |
| ·对LGG和S.aureus生物膜形成的影响 | 第59-60页 |
| 4 讨论 | 第60-62页 |
| 5 本章小结 | 第62-64页 |
| 第四章 Heparosan对大鼠肠道菌群的影响 | 第64-78页 |
| 1 材料 | 第64-65页 |
| ·菌株及培养基 | 第64页 |
| ·主要试剂 | 第64页 |
| ·主要仪器 | 第64-65页 |
| ·实验动物 | 第65页 |
| 2 方法 | 第65-71页 |
| ·动物分组及给药 | 第65页 |
| ·标本的采制及观察 | 第65页 |
| ·粪便样品总DNA的提取 | 第65-66页 |
| ·优势菌株16S V3可变区的PCR扩增 | 第66-67页 |
| ·优势菌株组成的变性梯度凝胶电泳 | 第67-69页 |
| ·T-载体克隆 | 第69-71页 |
| ·测序 | 第71页 |
| 3 结果 | 第71-76页 |
| ·大鼠状态及体重 | 第71-72页 |
| ·大鼠结肠的组织学观察 | 第72页 |
| ·优势菌株-PCR结果 | 第72页 |
| ·优势细菌组成差异分析 | 第72-76页 |
| 4 讨论 | 第76-77页 |
| 5 本章小结 | 第77-78页 |
| 总结与展望 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-93页 |
| 致谢 | 第93-95页 |
| 攻读研究生期间发表学术论文 | 第95-96页 |
| 附录 | 第96-101页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第101页 |