| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 插图和附表清单 | 第9-10页 |
| 本论文常用中英文缩写词 | 第10-11页 |
| 文献综述 | 第11-17页 |
| 引言 | 第17-19页 |
| 1 材料与方法 | 第19-39页 |
| ·实验动物 | 第19页 |
| ·质粒和菌种 | 第19页 |
| ·病毒和细胞 | 第19页 |
| ·酶类及相关试剂 | 第19-20页 |
| ·培养基 | 第20页 |
| ·常用溶液配制 | 第20-25页 |
| ·主要仪器 | 第25页 |
| ·NDVF蛋白抗原表位结构域基因原核表达质粒的构建 | 第25-36页 |
| ·NDVF蛋白抗原表位基因原核表达与鉴定 | 第36页 |
| ·融合蛋白的大量提取及纯化 | 第36-37页 |
| ·抗新城疫多抗制备的实验方法 | 第37-38页 |
| ·融合蛋白的免疫学活性检测实验方法 | 第38-39页 |
| 2 结果与分析 | 第39-49页 |
| ·NDVF蛋白抗原表位结构域基因的克隆与鉴定 | 第39-41页 |
| ·提取NDV中的总RNA | 第39页 |
| ·RT-PCR扩增的NDV F509基因 | 第39页 |
| ·RT-PCR扩增的NDV F蛋白抗原表位结构域基因 | 第39-40页 |
| ·NDV F蛋白抗原表位结构域基因的双酶切鉴定 | 第40-41页 |
| ·重组质粒pGEX-4T-F509和pET-32-F306中插入目的片段的DNA序列测定 | 第41页 |
| ·重组质粒的原核表达及鉴定 | 第41-43页 |
| ·SDS-PAGE检测诱导表达的融合蛋白 | 第41-42页 |
| ·融合蛋白的可溶性鉴定 | 第42-43页 |
| ·融合蛋白的提取与纯化 | 第43-47页 |
| ·重组质粒诱导表达的条件优化 | 第43-46页 |
| ·融合蛋白的大量提取结果 | 第46-47页 |
| ·融合蛋白的浓度测定 | 第47页 |
| ·鼠抗NDV F蛋白抗原表位结构域多克隆抗体的鉴定结果 | 第47-48页 |
| ·病毒的复制与纯化 | 第48页 |
| ·Western-blot检测结果 | 第48-49页 |
| 3 讨论 | 第49-52页 |
| ·不同的方法对NDV增殖的影响 | 第49页 |
| ·NDV F蛋白串联多表位基因的构建方法 | 第49页 |
| ·宿主菌的选择 | 第49-50页 |
| ·融合蛋白可溶性的影响因素 | 第50页 |
| ·融合蛋白的复性及影响因素 | 第50-51页 |
| ·融合蛋白的亲和层析纯化 | 第51-52页 |
| 4 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 作者简介 | 第60-61页 |
