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岩藻糖基化海参硫酸软骨素抑制肿瘤生长和转移作用及其机制的研究

摘要第1-7页
Abstract第7-15页
前言第15-25页
 1 肿瘤的发生及研究进展第15-17页
   ·肿瘤的发生与细胞凋亡第15-16页
   ·肿瘤的发生与细胞周期第16-17页
 2 肿瘤转移和血管新生第17-19页
   ·肿瘤侵袭和转移第17-18页
   ·血管新生第18-19页
 3 多糖抗肿瘤研究进展第19-23页
   ·多糖抗肿瘤的机制第19-20页
   ·多糖抗肿瘤活性与硫酸化的关系第20-21页
   ·岩藻糖基化海参硫酸软骨素的研究进展第21-23页
     ·岩藻糖基化海参硫酸软骨素的结构第21-22页
     ·SC-CHS 的生物活性第22-23页
 4 立题依据,研究目的和意义第23-25页
第一章 岩藻糖基化海参硫酸软骨素体外抗肿瘤作用的研究第25-39页
 第一节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素体外抗肿瘤活性筛选第25-30页
  1 材料和方法第25-28页
   ·实验材料第25-26页
     ·海参第25页
     ·细胞株第25-26页
   ·试剂第26页
   ·仪器第26页
   ·实验方法第26-28页
     ·SC-CHS 的制备第26-27页
     ·SC-CHS 体外抗肿瘤活性筛选第27页
     ·SC-CHS 对 95D LDH 释放量的影响第27-28页
   ·统计学分析第28页
  2 结果第28-30页
   ·SC-CHS 体外抗肿瘤活性的筛选第28-29页
   ·SC-CHS 对95D 细胞一般形态的影响第29页
   ·SC-CHS 对95D 细胞LDH 释放量的影响第29-30页
  3 小结第30页
 第二节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素对95D 细胞周期及凋亡的影响第30-39页
  1 材料和方法第31-33页
   ·实验材料第31页
   ·试剂第31页
   ·仪器第31-32页
   ·实验方法第32-33页
     ·AO/EB 染色法测定SC-CHS 对95D 细胞凋亡形态学的影响第32页
     ·流式细胞术检测SC-CHS 对95D 细胞凋亡的影响第32页
     ·RT-PCR 法测定95D 细胞周期调控和凋亡相关基因mRNA 表达第32-33页
  2 结果第33-37页
   ·SC-CHS 对95D 细胞凋亡形态的影响第33-34页
   ·SC-CHS 对95D 细胞凋亡的影响第34-35页
   ·SC-CHS 对95D 细胞周期调控基因表达的影响第35-36页
   ·SC-CHS 对95D 细胞凋亡相关基因mRNA 表达的影响第36-37页
  3 讨论第37-38页
  4 小结第38-39页
第二章 岩藻糖基化海参硫酸软骨素抗肿瘤转移作用的研究第39-57页
 第一节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素抗肿瘤转移作用的研究第40-50页
  1 材料与方法第40-43页
   ·实验材料第40页
     ·SC-CHS第40页
     ·细胞株第40页
   ·试剂第40页
   ·仪器第40-41页
   ·实验方法第41-43页
     ·SC-CHS 对95D 细胞同基质间粘附的影响第41页
     ·SC-CHS 对95D 细胞同HUVEC 细胞间粘附的影响第41页
     ·SC-CHS 对95D 细胞迁移能力的影响(Transwell 小室法)第41-42页
     ·SC-CHS 对95D 细胞侵袭能力的影响(Transwell 小室法)第42页
     ·RT-PCR 法检测95D 细胞转移相关基因mRNA 的表达第42-43页
   ·统计学分析第43页
  2 结果第43-48页
   ·SC-CHS 对95D 细胞同基质间粘附能力的影响第43-44页
   ·SC-CHS 对95D 细胞同HUVEC 细胞间粘附能力的影响第44页
   ·SC-CHS 对95D 细胞迁移能力的影响第44-45页
   ·SC-CHS 对95D 细胞侵袭能力的影响第45-47页
   ·SC-CHS 对95D 细胞转移相关基因mRNA 表达的影响第47-48页
  3 讨论第48-49页
  4 小结第49-50页
 第二节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素抑制肿瘤血管新生的研究第50-57页
  1 材料与方法第50-53页
   ·实验材料第50页
   ·试剂第50页
   ·仪器第50页
   ·实验方法第50-53页
     ·SC-CHS 对HUVEC 细胞体外小管形成的影响第50-51页
     ·对鸡胚尿囊膜(Chicken Chorioallantoic Membrane,CAM)血管生长的影响第51页
     ·RT-PCR 法检测95D 细胞血管生成相关基因Hif-1α和mRNA 的表达第51-52页
     ·对95D 细胞VEGF 蛋白表达的影响(Western-Blotting)第52-53页
   ·统计学分析第53页
  2 结果第53-55页
   ·SC-CHS 对HUVEC 细胞体外小管形成能力的影响第53页
   ·对鸡胚绒毛尿囊膜血管生长的影响第53-54页
   ·RT-PCR 法检测95D 细胞中Hif-1α和VEGF mRNA 的表达第54页
   ·SC-CHS 对95D 细胞VEGF 蛋白表达的影响第54-55页
  3 讨论第55-56页
  4 小结第56-57页
第三章 岩藻糖基化海参硫酸软骨素体内抑制肿瘤生长和转移作用及其机制的研究第57-75页
 第一节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素抑制小鼠lewis 肺癌生长和转移作用的研究第58-66页
  1 材料与方法第58-61页
   ·实验材料第58-59页
     ·SC-CHS第58页
     ·实验动物第58页
     ·细胞株第58页
     ·药品和试剂第58页
     ·主要仪器第58-59页
   ·实验方法第59-61页
     ·Lewis 肺癌细胞在小鼠体内传代第59页
     ·动物模型的复制和实验第59页
     ·肿瘤体积的测定第59-60页
     ·肿瘤抑制率的测定第60页
     ·肿瘤组织的病理组织学观察第60页
     ·Lewis 肺癌自发肺转移抑制率第60页
     ·肿瘤组织转移相关基因mRNA 表达的测定第60-61页
     ·血清TNF-α和γ-IFN 含量的测定第61页
   ·数据分析第61页
  2 结果第61-64页
   ·SC-CHS 对肿瘤生长的影响第61页
   ·SC-CHS 对小鼠抑瘤率的影响第61-62页
   ·SC-CHS 对肿瘤组织形态学的影响第62页
   ·SC-CHS 对荷瘤小鼠肺转移的影响第62-63页
   ·SC-CHS 对Hif-1α、Hpa 和VEGF mRNA 表达的影响第63-64页
   ·SC-CHS 对血清中TNF-α和γ-IFN 含量的影响第64页
  3 讨论第64-65页
  4 小结第65-66页
 第二节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素抑制小鼠黑色素瘤肺转移作用的研究第66-75页
  1 材料和方法第66-69页
   ·材料第66-67页
     ·SC-CHS第66页
     ·实验动物第66页
     ·细胞株第66页
     ·药品和试剂第66-67页
     ·主要仪器第67页
   ·实验方法第67-69页
     ·SC-CHS 对B16-F10 细胞生长的影响第67页
     ·SC-CHS 对B16-F10 细胞同基质粘附能力的影响第67页
     ·SC-CHS 对B16-F10 细胞同透明质酸粘附能力的影响第67-68页
     ·SC-CHS 对B16-F10 细胞同内皮细胞粘附能力的影响第68页
     ·SC-CHS 对B16-F10 细胞实验性肺转移的影响第68-69页
   ·数据分析第69页
  2 结果第69-72页
   ·SC-CHS 对B16-F10 细胞生长的影响第69页
   ·SC-CHS 降低B16-F10 细胞同基质和透明质酸的粘附能力第69-70页
   ·SC-CHS 降低B16-F10 细胞同内皮细胞HUVEC 的粘附能力第70页
   ·SC-CHS 对B16-F10 细胞肺转移的影响第70-71页
   ·SC-CHS 对血清中唾液酸含量和γ-谷胺酰转氨酶活力的影响第71页
   ·SC-CHS 对肺组织中羟脯氨酸含量的影响第71-72页
   ·SC-CHS 对肺组织中氨基己糖和糖醛酸含量的影响第72页
  3 讨论第72-74页
  4 小结第74-75页
结论第75-76页
本论文的特色及创新之处第76-77页
参考文献第77-84页
致谢第84-85页
个人简历第85-86页
论文发表情况第86页

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