摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-15页 |
前言 | 第15-25页 |
1 肿瘤的发生及研究进展 | 第15-17页 |
·肿瘤的发生与细胞凋亡 | 第15-16页 |
·肿瘤的发生与细胞周期 | 第16-17页 |
2 肿瘤转移和血管新生 | 第17-19页 |
·肿瘤侵袭和转移 | 第17-18页 |
·血管新生 | 第18-19页 |
3 多糖抗肿瘤研究进展 | 第19-23页 |
·多糖抗肿瘤的机制 | 第19-20页 |
·多糖抗肿瘤活性与硫酸化的关系 | 第20-21页 |
·岩藻糖基化海参硫酸软骨素的研究进展 | 第21-23页 |
·岩藻糖基化海参硫酸软骨素的结构 | 第21-22页 |
·SC-CHS 的生物活性 | 第22-23页 |
4 立题依据,研究目的和意义 | 第23-25页 |
第一章 岩藻糖基化海参硫酸软骨素体外抗肿瘤作用的研究 | 第25-39页 |
第一节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素体外抗肿瘤活性筛选 | 第25-30页 |
1 材料和方法 | 第25-28页 |
·实验材料 | 第25-26页 |
·海参 | 第25页 |
·细胞株 | 第25-26页 |
·试剂 | 第26页 |
·仪器 | 第26页 |
·实验方法 | 第26-28页 |
·SC-CHS 的制备 | 第26-27页 |
·SC-CHS 体外抗肿瘤活性筛选 | 第27页 |
·SC-CHS 对 95D LDH 释放量的影响 | 第27-28页 |
·统计学分析 | 第28页 |
2 结果 | 第28-30页 |
·SC-CHS 体外抗肿瘤活性的筛选 | 第28-29页 |
·SC-CHS 对95D 细胞一般形态的影响 | 第29页 |
·SC-CHS 对95D 细胞LDH 释放量的影响 | 第29-30页 |
3 小结 | 第30页 |
第二节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素对95D 细胞周期及凋亡的影响 | 第30-39页 |
1 材料和方法 | 第31-33页 |
·实验材料 | 第31页 |
·试剂 | 第31页 |
·仪器 | 第31-32页 |
·实验方法 | 第32-33页 |
·AO/EB 染色法测定SC-CHS 对95D 细胞凋亡形态学的影响 | 第32页 |
·流式细胞术检测SC-CHS 对95D 细胞凋亡的影响 | 第32页 |
·RT-PCR 法测定95D 细胞周期调控和凋亡相关基因mRNA 表达 | 第32-33页 |
2 结果 | 第33-37页 |
·SC-CHS 对95D 细胞凋亡形态的影响 | 第33-34页 |
·SC-CHS 对95D 细胞凋亡的影响 | 第34-35页 |
·SC-CHS 对95D 细胞周期调控基因表达的影响 | 第35-36页 |
·SC-CHS 对95D 细胞凋亡相关基因mRNA 表达的影响 | 第36-37页 |
3 讨论 | 第37-38页 |
4 小结 | 第38-39页 |
第二章 岩藻糖基化海参硫酸软骨素抗肿瘤转移作用的研究 | 第39-57页 |
第一节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素抗肿瘤转移作用的研究 | 第40-50页 |
1 材料与方法 | 第40-43页 |
·实验材料 | 第40页 |
·SC-CHS | 第40页 |
·细胞株 | 第40页 |
·试剂 | 第40页 |
·仪器 | 第40-41页 |
·实验方法 | 第41-43页 |
·SC-CHS 对95D 细胞同基质间粘附的影响 | 第41页 |
·SC-CHS 对95D 细胞同HUVEC 细胞间粘附的影响 | 第41页 |
·SC-CHS 对95D 细胞迁移能力的影响(Transwell 小室法) | 第41-42页 |
·SC-CHS 对95D 细胞侵袭能力的影响(Transwell 小室法) | 第42页 |
·RT-PCR 法检测95D 细胞转移相关基因mRNA 的表达 | 第42-43页 |
·统计学分析 | 第43页 |
2 结果 | 第43-48页 |
·SC-CHS 对95D 细胞同基质间粘附能力的影响 | 第43-44页 |
·SC-CHS 对95D 细胞同HUVEC 细胞间粘附能力的影响 | 第44页 |
·SC-CHS 对95D 细胞迁移能力的影响 | 第44-45页 |
·SC-CHS 对95D 细胞侵袭能力的影响 | 第45-47页 |
·SC-CHS 对95D 细胞转移相关基因mRNA 表达的影响 | 第47-48页 |
3 讨论 | 第48-49页 |
4 小结 | 第49-50页 |
第二节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素抑制肿瘤血管新生的研究 | 第50-57页 |
1 材料与方法 | 第50-53页 |
·实验材料 | 第50页 |
·试剂 | 第50页 |
·仪器 | 第50页 |
·实验方法 | 第50-53页 |
·SC-CHS 对HUVEC 细胞体外小管形成的影响 | 第50-51页 |
·对鸡胚尿囊膜(Chicken Chorioallantoic Membrane,CAM)血管生长的影响 | 第51页 |
·RT-PCR 法检测95D 细胞血管生成相关基因Hif-1α和mRNA 的表达 | 第51-52页 |
·对95D 细胞VEGF 蛋白表达的影响(Western-Blotting) | 第52-53页 |
·统计学分析 | 第53页 |
2 结果 | 第53-55页 |
·SC-CHS 对HUVEC 细胞体外小管形成能力的影响 | 第53页 |
·对鸡胚绒毛尿囊膜血管生长的影响 | 第53-54页 |
·RT-PCR 法检测95D 细胞中Hif-1α和VEGF mRNA 的表达 | 第54页 |
·SC-CHS 对95D 细胞VEGF 蛋白表达的影响 | 第54-55页 |
3 讨论 | 第55-56页 |
4 小结 | 第56-57页 |
第三章 岩藻糖基化海参硫酸软骨素体内抑制肿瘤生长和转移作用及其机制的研究 | 第57-75页 |
第一节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素抑制小鼠lewis 肺癌生长和转移作用的研究 | 第58-66页 |
1 材料与方法 | 第58-61页 |
·实验材料 | 第58-59页 |
·SC-CHS | 第58页 |
·实验动物 | 第58页 |
·细胞株 | 第58页 |
·药品和试剂 | 第58页 |
·主要仪器 | 第58-59页 |
·实验方法 | 第59-61页 |
·Lewis 肺癌细胞在小鼠体内传代 | 第59页 |
·动物模型的复制和实验 | 第59页 |
·肿瘤体积的测定 | 第59-60页 |
·肿瘤抑制率的测定 | 第60页 |
·肿瘤组织的病理组织学观察 | 第60页 |
·Lewis 肺癌自发肺转移抑制率 | 第60页 |
·肿瘤组织转移相关基因mRNA 表达的测定 | 第60-61页 |
·血清TNF-α和γ-IFN 含量的测定 | 第61页 |
·数据分析 | 第61页 |
2 结果 | 第61-64页 |
·SC-CHS 对肿瘤生长的影响 | 第61页 |
·SC-CHS 对小鼠抑瘤率的影响 | 第61-62页 |
·SC-CHS 对肿瘤组织形态学的影响 | 第62页 |
·SC-CHS 对荷瘤小鼠肺转移的影响 | 第62-63页 |
·SC-CHS 对Hif-1α、Hpa 和VEGF mRNA 表达的影响 | 第63-64页 |
·SC-CHS 对血清中TNF-α和γ-IFN 含量的影响 | 第64页 |
3 讨论 | 第64-65页 |
4 小结 | 第65-66页 |
第二节 岩藻糖基化海参硫酸软骨素抑制小鼠黑色素瘤肺转移作用的研究 | 第66-75页 |
1 材料和方法 | 第66-69页 |
·材料 | 第66-67页 |
·SC-CHS | 第66页 |
·实验动物 | 第66页 |
·细胞株 | 第66页 |
·药品和试剂 | 第66-67页 |
·主要仪器 | 第67页 |
·实验方法 | 第67-69页 |
·SC-CHS 对B16-F10 细胞生长的影响 | 第67页 |
·SC-CHS 对B16-F10 细胞同基质粘附能力的影响 | 第67页 |
·SC-CHS 对B16-F10 细胞同透明质酸粘附能力的影响 | 第67-68页 |
·SC-CHS 对B16-F10 细胞同内皮细胞粘附能力的影响 | 第68页 |
·SC-CHS 对B16-F10 细胞实验性肺转移的影响 | 第68-69页 |
·数据分析 | 第69页 |
2 结果 | 第69-72页 |
·SC-CHS 对B16-F10 细胞生长的影响 | 第69页 |
·SC-CHS 降低B16-F10 细胞同基质和透明质酸的粘附能力 | 第69-70页 |
·SC-CHS 降低B16-F10 细胞同内皮细胞HUVEC 的粘附能力 | 第70页 |
·SC-CHS 对B16-F10 细胞肺转移的影响 | 第70-71页 |
·SC-CHS 对血清中唾液酸含量和γ-谷胺酰转氨酶活力的影响 | 第71页 |
·SC-CHS 对肺组织中羟脯氨酸含量的影响 | 第71-72页 |
·SC-CHS 对肺组织中氨基己糖和糖醛酸含量的影响 | 第72页 |
3 讨论 | 第72-74页 |
4 小结 | 第74-75页 |
结论 | 第75-76页 |
本论文的特色及创新之处 | 第76-77页 |
参考文献 | 第77-84页 |
致谢 | 第84-85页 |
个人简历 | 第85-86页 |
论文发表情况 | 第86页 |