摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-16页 |
前言 | 第16-24页 |
1 骨髓造血调控 | 第16-21页 |
·造血细胞发生 | 第16-17页 |
·造血干细胞 | 第16页 |
·造血祖细胞 | 第16-17页 |
·粒-单核系祖细胞 | 第16-17页 |
·红系祖细胞 | 第17页 |
·巨核系祖细胞 | 第17页 |
·细胞因子及其受体的相互作用 | 第17-19页 |
·细胞因子对骨髓粒-单系祖细胞调控的影响 | 第17-18页 |
·细胞因子对骨髓红系祖细胞调控的影响 | 第18页 |
·细胞因子对骨髓巨核系祖细胞调控的影响 | 第18-19页 |
·骨髓细胞细胞周期与细胞凋亡 | 第19-21页 |
·概述 | 第19页 |
·骨髓细胞周期 | 第19-20页 |
·骨髓细胞凋亡 | 第20-21页 |
2 海参皂苷的研究进展 | 第21-22页 |
皂苷类物质促进造血功能的研究进展 | 第22页 |
3 立题依据及研究的目的和意义 | 第22-24页 |
第一章 革皮氏海参总皂苷的安全性评价 | 第24-37页 |
第一节 革皮氏海参总皂苷的急性毒性实验 | 第24-29页 |
1 材料和方法 | 第24-26页 |
·材料 | 第24-25页 |
·革皮氏海参 | 第24页 |
·实验动物 | 第24-25页 |
·试剂和仪器 | 第25页 |
·实验试剂 | 第25页 |
·实验仪器 | 第25页 |
·实验方法 | 第25-26页 |
·革皮氏海参总皂苷的制备 | 第25页 |
·预实验 | 第25页 |
·正式实验 | 第25-26页 |
·动物分组 | 第25-26页 |
·对小鼠外周血象的影响 | 第26页 |
·对小鼠血液生化指标的影响 | 第26页 |
·统计学分析 | 第26页 |
2 结果和讨论 | 第26-28页 |
·小鼠的一般形态观察 | 第26页 |
·半数致死量的确定 | 第26-27页 |
·对小鼠外周血象的影响 | 第27页 |
·对小鼠血液生化指标的影响 | 第27-28页 |
·对血清BUN 和Cr 含量的影响 | 第27-28页 |
·对小鼠血清AST 和ALT 含量的影响 | 第28页 |
3 结论 | 第28-29页 |
第二节 海参皂苷对大鼠30 天喂养实验的影响 | 第29-37页 |
1 材料和方法 | 第29-31页 |
·材料 | 第29页 |
·革皮氏海参 | 第29页 |
·实验动物 | 第29页 |
·试剂和仪器 | 第29页 |
·实验方法 | 第29-31页 |
·革皮氏海参总皂苷的制备 | 第29页 |
·动物分组及实验 | 第29-30页 |
·血清中葡萄糖含量的测定 | 第30页 |
·血清中白蛋白和总蛋白含量的测定 | 第30页 |
·血清中乳酸脱氢酶和肌酸激酶含量的测定 | 第30页 |
·血清BUN 含量的测定 | 第30页 |
·血清Cr 含量的测定 | 第30页 |
·血清尿酸含量的测定 | 第30页 |
·血清中低密度脂蛋白胆固醇、高密度脂蛋白胆固醇、总脂质和甘油三酯含量的测定 | 第30页 |
·血清中AST 和ALT 含量的测定 | 第30页 |
·对大鼠尿液中尿酸、BUN 和Cr 含量的影响 | 第30-31页 |
·统计学分析 | 第31页 |
2 结果和讨论 | 第31-36页 |
·一般状况观察 | 第31-32页 |
·海参皂苷对大鼠体重的影响 | 第31页 |
·海参皂苷对大鼠食量的影响 | 第31-32页 |
·海参皂苷对大鼠外周血象的影响 | 第32页 |
·对血液生化学指标的影响 | 第32-35页 |
·对大鼠血糖(blood sugar)含量的影响 | 第32-33页 |
·对大鼠血清中白蛋白和总蛋白含量的影响 | 第33页 |
·对大鼠血清乳酸脱氢酶和肌酸激酶含量的影响 | 第33-34页 |
·对大鼠血清尿素氮、肌酐和尿酸含量的影响 | 第34页 |
·对大鼠血清中脂质含量的影响 | 第34-35页 |
·对大鼠血清中AST 和ALT 含量的测定 | 第35页 |
·对大鼠尿液中UA、BUN 和Cr 含量的影响 | 第35-36页 |
3 小结 | 第36-37页 |
第二章 革皮氏海参总皂苷促进小鼠造血功能的影响 | 第37-58页 |
第一节 海参皂苷对小鼠骨髓细胞增殖和分化的影响 | 第37-47页 |
1 材料与方法 | 第37-40页 |
·材料 | 第37-38页 |
·革皮氏海参 | 第37页 |
·实验动物 | 第37页 |
·试剂与仪器 | 第37-38页 |
·实验试剂 | 第37-38页 |
·实验仪器 | 第38页 |
·实验方法 | 第38-40页 |
·革皮氏海参总皂苷的制备 | 第38页 |
·动物分组及模型建立 | 第38页 |
·对小鼠RET 的测定 | 第38-39页 |
·对小鼠骨髓有核细胞数的测定 | 第39页 |
·对小鼠造血干细胞的测定 | 第39页 |
·对小鼠造血祖细胞集落形成的测定 | 第39-40页 |
·粒-单系祖细胞集落培养 | 第39-40页 |
·红系祖细胞集落培养 | 第40页 |
·巨核系祖细胞集落培养 | 第40页 |
·统计学分析 | 第40页 |
2 结果 | 第40-44页 |
·对小鼠外周血象动态变化的影响 | 第40-41页 |
·对小鼠网织红细胞数的影响 | 第41-42页 |
·对小鼠骨髓有核细胞数的影响 | 第42页 |
·对小鼠造血干细胞增殖和分化的影响 | 第42-43页 |
·对小鼠造血祖细胞的影响 | 第43-44页 |
·对小鼠粒-单系祖细胞集落形成的影响 | 第43-44页 |
·对小鼠红系祖细胞集落形成的影响 | 第44页 |
·对小鼠巨核系祖细胞集落形成的影响 | 第44页 |
3 讨论 | 第44-46页 |
4 小结 | 第46-47页 |
第二节 海参皂苷对小鼠分泌集落刺激因子的影响 | 第47-58页 |
1 材料与方法 | 第47-49页 |
·材料 | 第47页 |
·革皮氏海参 | 第47页 |
·实验动物 | 第47页 |
·试剂与仪器 | 第47页 |
·实验试剂 | 第47页 |
·实验仪器 | 第47页 |
·实验方法 | 第47-49页 |
·革皮氏海参总皂苷的制备 | 第47页 |
·动物分组及模型建立 | 第47-48页 |
·鼠肺条件培养液(lung cell conditioned medium,LCM)的制备 | 第48页 |
·脾条件培养液(spleen cell conditioned medium,SCM)的制备 | 第48页 |
·腹腔巨噬细胞条件培养液(peritoneal cavity macrophage conditioned medium,PMΦCM)的制备 | 第48页 |
·集落刺激因子(colony stimulating factors,CSFs)活性测定 | 第48-49页 |
·对小鼠造血祖细胞集落形成的测定 | 第49页 |
·粒-单系祖细胞集落培养 | 第49页 |
·红系祖细胞集落培养 | 第49页 |
·巨核系祖细胞集落培养 | 第49页 |
·统计学分析 | 第49页 |
2 结果 | 第49-56页 |
·对模型小鼠分泌CSFs 的影响 | 第49-52页 |
·鼠肺条件培养液对小鼠骨髓粒-单系祖细胞增殖和分化的影响 | 第49-50页 |
·SCM 对小鼠骨髓红系祖细胞增殖和分化的影响 | 第50-51页 |
·PMΦCM 对小鼠骨髓细胞增殖和分化的影响 | 第51-52页 |
·对小鼠造血祖细胞增殖和分化的影响 | 第52-56页 |
·对小鼠粒-单系祖细胞集落形成的影响 | 第52-53页 |
·对小鼠红系祖细胞集落形成的影响 | 第53-54页 |
·对小鼠巨核系祖细胞集落形成的影响 | 第54-56页 |
3 讨论 | 第56页 |
4 小结 | 第56-58页 |
第三章 革皮氏海参总皂苷对小鼠骨髓造血细胞凋亡和细胞周期的影响 | 第58-68页 |
1 材料与方法 | 第58-61页 |
·材料 | 第58-59页 |
·革皮氏海参 | 第58页 |
·实验动物 | 第58页 |
·试剂与仪器 | 第58-59页 |
·实验试剂 | 第58-59页 |
·实验仪器 | 第59页 |
·实验方法 | 第59-61页 |
·革皮氏海参总皂苷的制备 | 第59页 |
·动物分组及模型建立 | 第59页 |
·对小鼠骨髓细胞细胞周期分布的影响 | 第59-60页 |
·对小鼠骨髓细胞凋亡的影响(Annexin V-FITC/PI 双染法) | 第60页 |
·RT–PCR 法检测小鼠骨髓细胞细胞周期和细胞凋亡相关基因mRNA 表达 | 第60-61页 |
·统计学分析 | 第61页 |
2 结果 | 第61-65页 |
·对小鼠骨髓细胞细胞周期分布的影响 | 第61-62页 |
·对小鼠骨髓细胞凋亡的影响 | 第62-64页 |
·对小鼠骨髓细胞周期基因 cyclin B1mRNA 表达的影响 | 第64-65页 |
·对细胞凋亡相关基因bcl-2 和bcl-xl mRNA 表达的影响 | 第65页 |
3 讨论 | 第65-67页 |
4 小结 | 第67-68页 |
第四章 革皮氏海参总皂苷对小鼠造血细胞因子基因m RNA 表达的影响 | 第68-75页 |
1 材料与方法 | 第68-70页 |
·材料 | 第68-69页 |
·革皮氏海参 | 第68页 |
·实验动物 | 第68页 |
·试剂与仪器 | 第68-69页 |
·实验方法 | 第69页 |
·革皮氏海参总皂苷的制备 | 第69页 |
·动物分组及模型建立 | 第69页 |
·RT–PCR 法检测小鼠骨髓细胞中细胞因子GM-CSF、EPOR 和 TPO mRNA 表达 | 第69页 |
·统计学分析 | 第69-70页 |
2 结果 | 第70-72页 |
·对小鼠骨髓造血细胞因子GM-CSF mRNA 表达的影响 | 第70页 |
·对小鼠骨髓造血细胞因子EPOR mRNA 表达的影响 | 第70-71页 |
·对小鼠骨髓造血细胞因子TPO mRNA 表达的影响 | 第71-72页 |
3 讨论 | 第72-74页 |
4 小结 | 第74-75页 |
结论 | 第75-77页 |
本论文的特色及创新之处 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
个人简历 | 第88-89页 |
硕士在读期间发表论文情况 | 第89页 |