| 中文摘要 | 第1-12页 |
| 英文摘要 | 第12-14页 |
| 1 前言 | 第14-53页 |
| ·细胞分裂素的新陈代谢、转运和信号传导 | 第14-27页 |
| ·细胞分裂素的结构 | 第14页 |
| ·细胞分裂素的生物合成 | 第14-20页 |
| ·细胞分裂素的降解和修饰 | 第20-21页 |
| ·细胞分裂素的转运 | 第21-23页 |
| ·细胞分裂素的信号传导 | 第23-27页 |
| ·成花转变 | 第27-34页 |
| ·影响开花时间的生理因素 | 第27-28页 |
| ·开花时间的遗传控制 | 第28-34页 |
| ·顶端分生组织 | 第34-38页 |
| ·花和花器官 | 第38-42页 |
| ·花和花器官的发育 | 第38-39页 |
| ·花器官数目的遗传调控 | 第39-42页 |
| ·顶端优势和分枝 | 第42-48页 |
| ·经典的假说 | 第44-46页 |
| ·生长素运输假说 | 第46页 |
| ·芽转变假说 | 第46-47页 |
| ·反馈调节机制 | 第47-48页 |
| ·发育单元和株型 | 第48-50页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第50-53页 |
| 2 材料与方法 | 第53-68页 |
| ·实验材料 | 第53-56页 |
| ·植物材料及其生长条件 | 第53页 |
| ·菌株与质粒 | 第53页 |
| ·酶及生化试剂 | 第53页 |
| ·PCR 引物 | 第53-56页 |
| ·培养基 | 第56页 |
| ·实验方法 | 第56-68页 |
| ·植物组织总 RNA 的提取 | 第56-57页 |
| ·植物基因组DNA 的小量提取 | 第57页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第57-58页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的转化 | 第58页 |
| ·碱法小量质粒DNA 的提取 | 第58-59页 |
| ·根癌农杆菌 GV3101 感受态细胞的制备 | 第59页 |
| ·AP1::IPT4 表达载体的构建 | 第59-61页 |
| ·AP1::CKX1 表达载体的构建 | 第61-62页 |
| ·355::CUC3 表达载体的构建 | 第62-63页 |
| ·ARR6::GUS 表达载体的构建 | 第63页 |
| ·冻融法农杆菌转化 | 第63页 |
| ·拟南芥的无土栽培、转化 | 第63-64页 |
| ·遗传杂交和遗传学分析 | 第64-65页 |
| ·形态学观察 | 第65页 |
| ·扫描电镜观察 | 第65页 |
| ·半薄切片的制备和观察 | 第65-66页 |
| ·GUS 染色分析 | 第66页 |
| ·半定量 RT-PCR 分析 | 第66页 |
| ·Affymetrix Arabidopsis 基因芯片分析 | 第66-67页 |
| ·植物激素的测定 | 第67-68页 |
| 3 结果与分析 | 第68-92页 |
| ·转基因植株的表型分析 | 第68-76页 |
| ·转基因植株细胞分裂素含量的测定 | 第76-77页 |
| ·利用全基因组芯片对转基因植株进行基因表达谱分析 | 第77-80页 |
| ·细胞分裂素调节拟南芥花序和花发育的遗传学分析 | 第80-92页 |
| ·细胞分裂素受体的突变体ahk2 ahk3 阻断转基因植株的表型 | 第80-81页 |
| ·LBD3 和CUC3 部分地参与AP1::IPT4 表型的形成 | 第81-86页 |
| ·CUC3 和 LBD3 受细胞分裂素受体的调控 | 第86页 |
| ·ARR6 突变抑制高浓度细胞分裂素引起的表型变化 | 第86-89页 |
| ·CLV 和AP1 基因在AP1::IPT4 植株中的功能分析 | 第89-92页 |
| 4 讨论 | 第92-99页 |
| ·AP1 启动子驱动IPT4 的表达提高花序中具生理活性细胞分裂素的含量并抑制赤霉素的合成 | 第92-93页 |
| ·转基因表达 AP1::IPT4 主要影响花序、花和花器官的发育 | 第93-94页 |
| ·AP1::IPT4 植株发育的变化与顶端分生组织的活动密切相关 | 第94-95页 |
| ·ARR6、LBD3 和CUC3 参与转基因植株表型的产生 | 第95-97页 |
| ·CUC3 和LBD3 位于细胞分裂素信号传导途径的下游 | 第97-99页 |
| 5 结论 | 第99-100页 |
| 6 参考文献 | 第100-129页 |
| 7 附录 | 第129-148页 |
| 8 致谢 | 第148-149页 |
| 9 攻读学位期间发表的学术论文 | 第149页 |
