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基于分子佐剂的禽腺病毒亚单位疫苗研究

摘要第5-6页
Abstract第6页
第1章 文献综述第9-21页
    1.1 禽腺病毒第9-11页
        1.1.1 流行病学第9页
        1.1.2 病原学第9-10页
        1.1.3 致病机制第10-11页
    1.2 禽腺病毒疫苗第11-14页
        1.2.1 灭活疫苗第11-12页
        1.2.2 减毒活疫苗第12页
        1.2.3 核酸疫苗第12-13页
        1.2.4 亚单位疫苗第13-14页
    1.3 动物疫苗佐剂第14-17页
        1.3.1 抗原传递佐剂第15页
        1.3.2 抗原共刺激佐剂第15-17页
    1.4 杆状病毒表达系统第17-19页
        1.4.1 昆虫细胞-杆状病毒表达系统第17-18页
        1.4.2 杆状病毒表达系统第18-19页
        1.4.3 杆状病毒表达系统的应用第19页
    1.5 本研究目的及意义第19-21页
第2章 禽腺病毒纤丝蛋白表达系统的构建第21-37页
    2.1 实验材料第21-23页
        2.1.1 菌株、质粒及基因引物第21页
        2.1.2 实验药品与试剂第21页
        2.1.4 实验试剂的配制第21-23页
    2.2 实验方法第23-31页
        2.2.1 菌种保藏及细胞的培养与冻存第23-24页
        2.2.2 pFastBac1-Fiber-2质粒的构建第24-26页
        2.2.3 重组杆状病毒Bacmid的构建第26-27页
        2.2.4 Bacmid-Fiber-2质粒转染Sf9细胞及病毒的获得第27-29页
        2.2.5 重组蛋白在sf9细胞中表达的MOI及收获时间第29-30页
        2.2.6 重组蛋白的制备第30-31页
    2.3 实验结果第31-35页
        2.3.1 基因获取与pFastBac1-Fiber-2的构建第31-32页
        2.3.2 重组杆状病毒Bacmid-Fiber-2表达质粒构建第32-33页
        2.3.3 杆状病毒的收获第33-34页
        2.3.4 Fiber-2的表达第34页
        2.3.5 重组蛋白Fiber-2的效价第34-35页
    2.4 讨论第35-36页
    2.5 小结第36-37页
第3章 细胞因子类分子佐剂的构建与表达第37-45页
    3.1 实验材料第37-38页
    3.2 实验方法第38-40页
        3.2.1 pET28a-chIL-2和pET28a-chIFN-γ表达系统的构建第38-39页
        3.2.2 重组细胞因子在大肠杆菌中的表达第39页
        3.2.3 重组细胞因子的复性第39-40页
    3.3 实验结果第40-43页
        3.3.1 重组大肠杆菌的构建第40-41页
        3.3.2 重组细胞因子的表达第41-43页
    3.4 讨论第43-44页
    3.5 小结第44-45页
第4章 腺病毒亚单位疫苗制备及效果评价第45-51页
    4.1 实验材料第45页
    4.2 亚单位疫苗的制备及接种方案第45-47页
        4.2.1 亚单位疫苗的制备第45页
        4.2.2 Fiber-2单独接种第45页
        4.2.3 Fiber-2与分子佐剂联合接种第45-47页
    4.3 动物免疫实验结果第47-49页
        4.3.1 Fiber-2单独接种第47页
        4.3.2 Fiber-2与分子佐剂联合接种第47-48页
        4.3.3 抗体水平第48-49页
    4.4 讨论第49页
    4.5 小结第49-51页
第5章 结论与展望第51-53页
参考文献第53-57页
致谢第57页

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