| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第14-30页 |
| 1.1 UVR8光受体对UV-B的感知 | 第14-23页 |
| 1.1.1 植物光受体与光形态建成 | 第14-15页 |
| 1.1.2 UV-B光对植物的影响 | 第15-16页 |
| 1.1.3 UV-B光受体UVR8 | 第16-23页 |
| 1.1.3.1 UVR8的发现 | 第16-17页 |
| 1.1.3.2 UVR8的结构解析与感光机制 | 第17-20页 |
| 1.1.3.3 UVR8体内功能研究 | 第20-22页 |
| 1.1.3.4 UVR8表达模式与亚细胞定位 | 第22-23页 |
| 1.2 UVR8介导的UV-B信号转导 | 第23-29页 |
| 1.2.1 UV-B依赖的UVR8-COP1相互作用 | 第23-27页 |
| 1.2.2 bZIP转录因子HY5 | 第27-28页 |
| 1.2.3 WD40蛋白RUP1和RUP2 | 第28-29页 |
| 1.3 本论文的研究目的和意义 | 第29-30页 |
| 1.3.1 本论文的研究目的 | 第29页 |
| 1.3.2 本论文的研究意义 | 第29-30页 |
| 第二章 材料与方法 | 第30-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第30-33页 |
| 2.1.1 植物、抗体、载体和菌株 | 第30页 |
| 2.1.2 仪器、酶和试剂 | 第30-32页 |
| 2.1.3 引物信息 | 第32-33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-39页 |
| 2.2.1 拟南芥生长条件 | 第33页 |
| 2.2.2 载体构建 | 第33页 |
| 2.2.3 农杆菌介导的拟南芥遗传转化和转基因植物的筛选 | 第33-34页 |
| 2.2.4 下胚轴长度测量 | 第34页 |
| 2.2.5 花青素含量测定 | 第34页 |
| 2.2.6 植物RNA提取、反转录和荧光定量PCR实验 | 第34-36页 |
| 2.2.7 蛋白质免疫印迹实验 | 第36页 |
| 2.2.8 植物中UVR8构象分析 | 第36页 |
| 2.2.9 共聚焦显微镜观察实验 | 第36页 |
| 2.2.10 蛋白定量与荧光定量 | 第36-37页 |
| 2.2.11 核质分离实验 | 第37页 |
| 2.2.12 免疫共沉淀实验 | 第37-39页 |
| 第三章 结果 | 第39-58页 |
| 3.1 UV-B光调节UVR8亚细胞分布 | 第39-44页 |
| 3.1.1 UV-B光促进UVR8在细胞核内积累 | 第39-40页 |
| 3.1.2 UV-B光促进UVR8单体在细胞核内快速积累 | 第40-41页 |
| 3.1.3 UVR8构象与亚细胞定位之间的关系 | 第41-44页 |
| 3.2 UV-B光通过指导UVR8亚细胞定位来调控它的生物学活性 | 第44-58页 |
| 3.2.1 条件性定位的UVR8及其突变体转基因材料的筛选与鉴定 | 第44-45页 |
| 3.2.2 UVR8及其突变体的亚细胞定位分析 | 第45-46页 |
| 3.2.3 UVR8亚细胞定位对光形态建成的影响 | 第46-49页 |
| 3.2.4 UVR8亚细胞定位对UV-B响应基因表达的影响 | 第49-55页 |
| 3.2.5 UVR8亚细胞定位对UV-B光信号的感知与传递的影响 | 第55-58页 |
| 第四章 讨论 | 第58-62页 |
| 4.1 UV-B光调节UVR8的亚细胞定位 | 第58-59页 |
| 4.2 UV-B光通过指导UVR8亚细胞定位来调控它的生物学活性 | 第59-62页 |
| 第五章 结论与展望 | 第62-65页 |
| 5.1 结论 | 第62-63页 |
| 5.2 特色与创新点 | 第63-64页 |
| 5.3 不足与展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-68页 |
| 论文发表情况 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
