| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 第1章 引言 | 第14-27页 |
| 1.1 海带简介 | 第14页 |
| 1.2 岩藻黄素概述 | 第14-18页 |
| 1.2.1 岩藻黄素的结构及性质 | 第14-15页 |
| 1.2.2 岩藻黄素的生理功能 | 第15-16页 |
| 1.2.3 岩藻黄素提取方法简述 | 第16-18页 |
| 1.3 岩藻聚糖概述 | 第18-25页 |
| 1.3.1 岩藻聚糖的基本化学成分及糖链连接方式 | 第18-20页 |
| 1.3.2 硫酸基团位点 | 第20页 |
| 1.3.3 岩藻聚糖的降解方法 | 第20-22页 |
| 1.3.4 岩藻聚糖的生物活性研究进展 | 第22-25页 |
| 1.4 论文的立体依据、研究目的和主要研究内容 | 第25-27页 |
| 1.4.1 立题依据及研究目的 | 第25页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第25-27页 |
| 第2章 海带中岩藻黄素的提取及纯化工艺研究 | 第27-38页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 材料与设备 | 第27-28页 |
| 2.2.1 实验原料 | 第27页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第27-28页 |
| 2.2.3 主要仪器设备 | 第28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.3.1 海带岩藻黄素分离纯化的工艺流程 | 第28页 |
| 2.3.2 岩藻黄素提取纯化工艺 | 第28-29页 |
| 2.3.3 岩藻黄素测定方法 | 第29页 |
| 2.3.4 层析柱法纯化岩藻黄素 | 第29页 |
| 2.3.5 色谱法测定岩藻黄素含量 | 第29-30页 |
| 2.4 结果与分析 | 第30-33页 |
| 2.4.1 岩藻黄素最大吸收峰值的确定 | 第30页 |
| 2.4.2 提取溶剂的筛选 | 第30-31页 |
| 2.4.3 提取温度对岩藻黄素提取率的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.4 提取时间的影响 | 第32页 |
| 2.4.5 料液比的影响 | 第32页 |
| 2.4.6 提取次数对提取率的影响 | 第32-33页 |
| 2.5 岩藻黄素最佳提取工艺条件确定 | 第33-34页 |
| 2.6 岩藻黄素的纯化分析 | 第34-36页 |
| 2.6.1 UV-VIS光谱分析 | 第34-35页 |
| 2.6.2 岩藻黄素HPLC分析 | 第35-36页 |
| 2.7 岩藻黄素的含量分析及讨论 | 第36-37页 |
| 2.8 本章小节 | 第37-38页 |
| 第3章 低分子量岩藻聚糖酶法制备工艺的研究 | 第38-51页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第38-39页 |
| 3.2.1 原料与试剂 | 第38-39页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-43页 |
| 3.3.1 实验流程 | 第39页 |
| 3.3.2 鲍内脏粗酶液的提取制备 | 第39页 |
| 3.3.3 鲍内脏粗酶的不同纯化方法比较 | 第39-41页 |
| 3.3.4 黏度测定 | 第41页 |
| 3.3.5 酶解时间及底物浓度对酶活力的影响试验 | 第41页 |
| 3.3.6 层析柱纯化试验 | 第41页 |
| 3.3.7 标准曲线制作 | 第41-43页 |
| 3.3.8 数据处理方法 | 第43页 |
| 3.4 结果与分析 | 第43-49页 |
| 3.4.1 初级纯化方法对酶活的影响 | 第43-45页 |
| 3.4.2 酶解产物SO_4~(2-)的保留率 | 第45页 |
| 3.4.3 酶反应历程的特点 | 第45-46页 |
| 3.4.4 底物浓度对酶促反应的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.5 硫酸铵分段沉淀法 | 第47页 |
| 3.4.6 柱层析纯化 | 第47-49页 |
| 3.5 讨论 | 第49-50页 |
| 3.6 本章小节 | 第50-51页 |
| 第4章 H_2O_2制备低分子岩藻聚糖工艺研究 | 第51-56页 |
| 4.1 引言 | 第51页 |
| 4.2 材料与方法 | 第51-52页 |
| 4.2.1 原料与试剂 | 第51页 |
| 4.2.2 主要仪器及设备 | 第51-52页 |
| 4.2.3 试验方法 | 第52页 |
| 4.3 实验结果 | 第52-55页 |
| 4.3.1 H_2O_2一步降解岩藻聚糖 | 第52-54页 |
| 4.3.2 H_2O_2分步降解岩藻聚糖 | 第54-55页 |
| 4.4 本章小节 | 第55-56页 |
| 第5章 物理化学-酶法联合工艺制备低分子量岩藻聚糖的工艺研究 | 第56-67页 |
| 5.1 引言 | 第56页 |
| 5.2 实验材料 | 第56-57页 |
| 5.2.1 材料 | 第56-57页 |
| 5.2.2 仪器设备 | 第57页 |
| 5.3 实验方法 | 第57-59页 |
| 5.3.1 鲍鱼内脏酶酶活的测定 | 第57页 |
| 5.3.2 酶解效果评价方法的确定 | 第57页 |
| 5.3.3 物理化学法预处理岩藻聚糖 | 第57-58页 |
| 5.3.4 酶解物理化学法预处理得到的底物 | 第58页 |
| 5.3.5 理化指标的测定 | 第58-59页 |
| 5.4 结果与分析 | 第59-65页 |
| 5.4.1 粗酶酶解效果 | 第59-60页 |
| 5.4.2 酶解效果评价指标的研究 | 第60-62页 |
| 5.4.3 物理化学方法降解岩藻聚糖 | 第62-64页 |
| 5.4.4 酶解物理化学法预处理的底物 | 第64-65页 |
| 5.5 本章小节 | 第65-67页 |
| 第6章 结论与展望 | 第67-70页 |
| 6.1 主要结论 | 第67-68页 |
| 6.1.1 海带中岩藻黄素的提取及纯化工艺研究 | 第67页 |
| 6.1.2 低分子量岩藻聚糖酶法制备工艺的研究 | 第67页 |
| 6.1.3 H_2O_2制备低分子岩藻聚糖工艺研究 | 第67-68页 |
| 6.1.4 物理化学-酶法联合工艺制备低分子量岩藻聚糖的研究 | 第68页 |
| 6.2 创新点 | 第68页 |
| 6.3 展望 | 第68-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-80页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第80页 |
