| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 0 前言 | 第18-44页 |
| 0.1 生物胺简介 | 第18页 |
| 0.2 生物胺的功能、危害及限量标准 | 第18-21页 |
| 0.2.1 生物胺的生理功能 | 第18-19页 |
| 0.2.2 生物胺的解毒和中毒机制 | 第19-20页 |
| 0.2.3 生物胺的危害 | 第20-21页 |
| 0.2.4 生物胺的限量标准 | 第21页 |
| 0.3 食品中生物胺的形成及影响因素 | 第21-24页 |
| 0.3.1 食品中生物胺的形成 | 第21-22页 |
| 0.3.2 食品中常见的生物胺产生菌 | 第22-23页 |
| 0.3.3 影响食品中生物胺含量的因素 | 第23-24页 |
| 0.4 食品中生物胺的检测方法 | 第24-29页 |
| 0.4.1 薄层色谱法 | 第25页 |
| 0.4.2 毛细管电泳法 | 第25-26页 |
| 0.4.3 气相色谱法 | 第26页 |
| 0.4.4 生物传感器法 | 第26-27页 |
| 0.4.5 高效液相色谱法 | 第27-29页 |
| 0.5 生物胺在食品中的分布 | 第29-34页 |
| 0.5.1 含酒精饮品 | 第29-31页 |
| 0.5.2 肉制品类 | 第31-32页 |
| 0.5.3 水产品类 | 第32-33页 |
| 0.5.4 乳制品类 | 第33-34页 |
| 0.5.5 调味品类 | 第34页 |
| 0.6 食品中生物胺的控制方法 | 第34-41页 |
| 0.6.1 生产工艺控制 | 第35页 |
| 0.6.2 食品添加剂和香料控制 | 第35-36页 |
| 0.6.3 超高压控制 | 第36-37页 |
| 0.6.4 辐照控制 | 第37-38页 |
| 0.6.5 气调包装控制 | 第38页 |
| 0.6.6 发酵剂控制 | 第38-41页 |
| 0.7 立题依据和研究意义 | 第41-42页 |
| 0.8 研究技术路线和研究内容 | 第42-44页 |
| 0.8.1 技术路线 | 第42页 |
| 0.8.2 研究内容 | 第42-44页 |
| 1 国内市售鱼露产品的生物胺含量调查 | 第44-61页 |
| 1.1 材料、试剂与仪器 | 第44-47页 |
| 1.1.1 鱼露样品 | 第44-46页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第46-47页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第47页 |
| 1.2 试验方法 | 第47-50页 |
| 1.2.1 Dns-Cl 柱前衍生 HPLC-FLD 法测定鱼露中的生物胺含量 | 第47-48页 |
| 1.2.2 生物胺测定方法的验证 | 第48-49页 |
| 1.2.3 市售鱼露中常规理化指标的测定 | 第49-50页 |
| 1.2.4 数据处理 | 第50页 |
| 1.3 结果分析与讨论 | 第50-60页 |
| 1.3.1 酸介质对鱼露中生物胺提取效果的影响 | 第50-51页 |
| 1.3.2 生物胺测定方法的验证 | 第51-53页 |
| 1.3.3 市售鱼露的常规理化性质 | 第53-56页 |
| 1.3.4 市售鱼露的生物胺含量 | 第56-60页 |
| 1.4 小结 | 第60-61页 |
| 2 耐盐性多种生物胺高效降解菌的筛选及新菌的分类鉴定 | 第61-86页 |
| 2.1 材料、试剂与仪器 | 第61-64页 |
| 2.1.1 分菌材料 | 第61-62页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第62-63页 |
| 2.1.3 培养基 | 第63-64页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第64页 |
| 2.2 试验方法 | 第64-70页 |
| 2.2.1 耐盐性高效生物胺降解菌的筛选 | 第64-65页 |
| 2.2.1.1 耐盐性微生物的选择性分类富集与纯化 | 第64-65页 |
| 2.2.1.2 生物胺降解能力的评价 | 第65页 |
| 2.2.1.3 生物胺降解菌产生生物胺能力的评价 | 第65页 |
| 2.2.2 新种-汕头盐单胞菌（Halomonas shantousis sp.nov.）的分类鉴定 | 第65-70页 |
| 2.2.2.1 遗传学分类鉴定 | 第65-67页 |
| 2.2.2.2 表型特征分类鉴定 | 第67页 |
| 2.2.2.3 生理生化分类鉴定 | 第67-70页 |
| 2.2.2.4 脂肪酸组成 | 第70页 |
| 2.3 结果分析与讨论 | 第70-85页 |
| 2.3.1 耐盐性高效生物胺降解菌的筛选 | 第70-74页 |
| 2.3.1.1 苯乙胺及其测定方法的确定 | 第70-71页 |
| 2.3.1.2 耐盐性高效生物胺降解菌的筛选 | 第71-73页 |
| 2.3.1.3 生物胺降解菌产生生物胺的能力 | 第73-74页 |
| 2.3.2 新种-汕头盐单胞菌（Halomonas shantousis sp.nov.）的分类鉴定 | 第74-85页 |
| 2.3.2.1 菌株 SWA25~T的遗传学鉴定结果 | 第74-80页 |
| 2.3.2.2 菌株 SWA25~T的表型鉴定结果 | 第80页 |
| 2.3.2.3 菌株 SWA25~T的生理生化鉴定结果 | 第80-84页 |
| 2.3.2.4 菌株 SWA25~T的脂肪酸组成 | 第84-85页 |
| 2.3.2.5 菌株 SWA25~T的分类鉴定总结 | 第85页 |
| 2.4 小结 | 第85-86页 |
| 3 Halomonas shantousis SWA25 降解生物胺特性研究 | 第86-102页 |
| 3.1 试剂与仪器 | 第86-87页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第86页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第86-87页 |
| 3.2 试验方法 | 第87-91页 |
| 3.2.1 H.shantousis SWA25 种子液制备 | 第87页 |
| 3.2.2 H.shantousis SWA25 在正常培养和混合生物胺胁迫下的生长曲线 | 第87页 |
| 3.2.3 单种生物胺对 H.shantousis SWA25 生长的影响 | 第87页 |
| 3.2.4 H.shantousis SWA25 降低生物胺作用方式 | 第87-88页 |
| 3.2.5 H.shantousis SWA25 对混合生物胺的降解动力学研究 | 第88页 |
| 3.2.6 环境因素对 H.shantousis SWA25 降解生物胺的影响 | 第88-90页 |
| 3.2.7 H.shantousis SWA25 降解生物胺酶的初步研究 | 第90-91页 |
| 3.2.8 数据处理 | 第91页 |
| 3.3 结果分析与讨论 | 第91-100页 |
| 3.3.1 H.shantousis SWA25 在正常条件和混合生物胺胁迫下的生长 | 第91-92页 |
| 3.3.2 单种生物胺对 H.shantousis SWA25 生长的影响 | 第92-93页 |
| 3.3.3 H.shantousis SWA25 降低生物胺作用方式 | 第93-94页 |
| 3.3.4 H.shantousis SWA25 对混合生物胺的降解动力学 | 第94-95页 |
| 3.3.5 环境因素对 H.shantousis SWA25 降解混合生物胺的影响 | 第95-98页 |
| 3.3.6 H.shantousis SWA25 降解生物胺酶的初步研究 | 第98-100页 |
| 3.4 小结 | 第100-102页 |
| 4 Halomonas shantousis SWA25 的安全性评价 | 第102-115页 |
| 4.1 试剂、材料与仪器 | 第102-103页 |
| 4.1.1 试验菌株 | 第102页 |
| 4.1.2 试验动物 | 第102页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第102页 |
| 4.1.4 主要仪器 | 第102-103页 |
| 4.2 试验方法 | 第103-106页 |
| 4.2.1 H.shantousis SWA25 冻干粉的制备 | 第103页 |
| 4.2.2 H.shantousis SWA25 对小鼠的急性毒性试验 | 第103页 |
| 4.2.3 H.shantousis SWA25 的遗传毒性试验 | 第103-105页 |
| 4.2.4 H.shantousis SWA25 的 30 天喂养试验 | 第105-106页 |
| 4.2.5 数据处理 | 第106页 |
| 4.3 结果分析与讨论 | 第106-114页 |
| 4.3.1 H.shantousis SWA25 的急性毒性试验 | 第106页 |
| 4.3.2 H.shantousis SWA25 的遗传毒性试验 | 第106-109页 |
| 4.3.3 H.shantousis SWA25 的 30 天喂养试验 | 第109-114页 |
| 4.4 小结 | 第114-115页 |
| 5 Halomonas shantousis SWA25 控制黄鲫发酵鱼露中生物胺含量的研究 | 第115-132页 |
| 5.1 试剂、材料与仪器 | 第115-116页 |
| 5.1.1 原料鱼 | 第115页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第115页 |
| 5.1.3 培养基 | 第115-116页 |
| 5.1.4 主要仪器 | 第116页 |
| 5.2 试验方法 | 第116-118页 |
| 5.2.1 H.shantousis SWA25 发酵剂的制备 | 第116页 |
| 5.2.2 发酵鱼露的制备 | 第116-117页 |
| 5.2.3 pH、NaCl 浓度、总可溶性氮和 AAN 的测定 | 第117页 |
| 5.2.4 挥发性盐基氮的测定 | 第117页 |
| 5.2.5 游离氨基酸的测定 | 第117页 |
| 5.2.6 微生物的测定 | 第117页 |
| 5.2.7 生物胺的测定 | 第117-118页 |
| 5.2.8 感官评价 | 第118页 |
| 5.2.9 数据处理 | 第118页 |
| 5.3 结果分析与讨论 | 第118-131页 |
| 5.3.1 H.shantousis SWA25 发酵剂对鱼露 pH 值的影响 | 第118-119页 |
| 5.3.2 H.shantousis SWA25 发酵剂对鱼露 NaCl 浓度的影响 | 第119-120页 |
| 5.3.3 H.shantousis SWA25 发酵剂对鱼露 TSN 和 AAN 含量的影响 | 第120-121页 |
| 5.3.4 H.shantousis SWA25 发酵剂对鱼露 TVB-N 含量的影响 | 第121-122页 |
| 5.3.5 H.shantousis SWA25 发酵剂对鱼露游离氨基酸组成的影响 | 第122-123页 |
| 5.3.6 H.shantousis SWA25 发酵剂对鱼露中总好氧微生物的影响 | 第123-124页 |
| 5.3.7 H.shantousis SWA25 发酵剂对鱼露中生物胺产生菌的影响 | 第124-126页 |
| 5.3.8 H.shantousis SWA25 发酵剂对鱼露中生物胺含量的影响 | 第126-130页 |
| 5.3.9 H.shantousis SWA25 发酵剂对鱼露感官评价的影响 | 第130-131页 |
| 5.4 小结 | 第131-132页 |
| 6 Halomonas shantousis SWA25 控制鲢鱼肉发酵香肠中生物胺含量的研究 | 第132-156页 |
| 6.1 菌株、试剂与仪器 | 第133-134页 |
| 6.1.1 试验菌株 | 第133页 |
| 6.1.2 主要试剂 | 第133页 |
| 6.1.3 培养基 | 第133-134页 |
| 6.1.4 主要仪器 | 第134页 |
| 6.2 试验方法 | 第134-139页 |
| 6.2.1 发酵乳酸菌的选择 | 第134-135页 |
| 6.2.2 H.shantousis SWA25 和 L.plantarum CICC20718 发酵剂的制备 | 第135-136页 |
| 6.2.3 发酵鲢鱼肉香肠的制备 | 第136页 |
| 6.2.4 常规物理化学指标的测定 | 第136-138页 |
| 6.2.5 微生物分析 | 第138页 |
| 6.2.6 生物胺分析 | 第138页 |
| 6.2.7 感官评定 | 第138-139页 |
| 6.2.8 数据处理 | 第139页 |
| 6.3 结果与分析与讨论 | 第139-155页 |
| 6.3.1 发酵乳酸菌的选择 | 第139-141页 |
| 6.3.2 鲢鱼肉原料的质量分析 | 第141-142页 |
| 6.3.3 鲢鱼肉香肠发酵过程中 pH 值和 TA 含量的变化 | 第142-143页 |
| 6.3.4 鲢鱼肉香肠发酵过程中水分含量和 Aw 的变化 | 第143-144页 |
| 6.3.5 鲢鱼肉香肠发酵过程中 TVB-N 含量的变化 | 第144页 |
| 6.3.6 鲢鱼肉香肠游离氨基酸组成的变化 | 第144-145页 |
| 6.3.7 鲢鱼肉香肠发酵过程中质构的变化 | 第145-146页 |
| 6.3.8 鲢鱼肉香肠发酵过程中颜色的变化 | 第146-147页 |
| 6.3.9 鲢鱼肉香肠发酵过程中微生物的变化 | 第147-150页 |
| 6.3.10 鲢鱼肉香肠发酵过程中生物胺含量变化 | 第150-154页 |
| 6.3.11 发酵鲢鱼肉香肠的感官评价 | 第154-155页 |
| 6.4 小结 | 第155-156页 |
| 全文结论 | 第156-158页 |
| 今后研究方向 | 第158-159页 |
| 论文创新点 | 第159-160页 |
| 参考文献 | 第160-193页 |
| 个人简介 | 第193-194页 |
| 缩写词表 | 第194-195页 |
| 发表论文 | 第195-196页 |
| 参与的科研项目 | 第196页 |
| 获奖情况 | 第196-197页 |
| 致谢 | 第197-198页 |
