中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
前言 | 第12-14页 |
研究现状、成果 | 第12-13页 |
研究目的、方法 | 第13-14页 |
一、兔坐骨神经损伤后内源性生长因子含量的变化及意义 | 第14-21页 |
1.1 对象和方法 | 第14-16页 |
1.1.1 实验材料及试剂 | 第14页 |
1.1.2 实验试剂配制 | 第14页 |
1.1.3 实验仪器 | 第14页 |
1.1.4 实验方法 | 第14-16页 |
1.1.5 统计学分析 | 第16页 |
1.2 结果 | 第16页 |
1.2.1 兔坐骨神经损伤模型的观察 | 第16页 |
1.2.2 各组中神经匀浆上清液生长因子含量的变化 | 第16页 |
1.3 讨论 | 第16-18页 |
1.3.1 组织匀浆与神经营养因子 | 第16-17页 |
1.3.2 神经修复与神经再生 | 第17页 |
1.3.3 干细胞治疗神经损伤 | 第17-18页 |
1.4 小结 | 第18-19页 |
附图 | 第19-21页 |
二、兔坐骨神经匀浆上清液对脂肪干细胞的诱导分化作用 | 第21-32页 |
2.1 对象和方法 | 第21-27页 |
2.1.1 实验材料及试剂 | 第21页 |
2.1.2 实验试剂配制 | 第21-22页 |
2.1.3 实验仪器 | 第22-23页 |
2.1.4 实验方法 | 第23-27页 |
2.1.5 统计学分析 | 第27页 |
2.2 结果 | 第27页 |
2.2.1 ADSCs的形态学观察 | 第27页 |
2.2.2 ADSCs向神经系细胞诱导时的形态变化 | 第27页 |
2.2.3 实时荧光定量PCR检测结果 | 第27页 |
2.3 讨论 | 第27-29页 |
2.3.1 酶消化法分离提取ADSCs | 第28页 |
2.3.2 干细胞与其所处微环境的关系 | 第28-29页 |
2.4 小结 | 第29-30页 |
附图 | 第30-32页 |
三、低渗联合冻干技术改良制备组织工程神经支架及其性能研究 | 第32-44页 |
3.1 对象和方法 | 第32-36页 |
3.1.1 实验材料及试剂 | 第32页 |
3.1.2 实验试剂配制 | 第32页 |
3.1.3 实验仪器 | 第32-33页 |
3.1.4 实验方法 | 第33-35页 |
3.1.5 统计学分析 | 第35-36页 |
3.2 结果 | 第36页 |
3.2.1 支架组织学观察 | 第36页 |
3.2.2 支架Laminin免疫荧光染色 | 第36页 |
3.2.3 支架扫描电镜观察 | 第36页 |
3.2.4 支架生物力学性能 | 第36页 |
3.2.5 支架材料细胞相容性 | 第36页 |
3.3 讨论 | 第36-38页 |
3.3.1 支架材料与神经组织工程 | 第37页 |
3.3.2 低渗冻干改良制备脱细胞神经支架材料 | 第37页 |
3.3.3 支架的理化性能及细胞相容性 | 第37-38页 |
3.4 小结 | 第38-39页 |
附图 | 第39-44页 |
四、以改良脱细胞神经支架复合脂肪干细胞体外及裸鼠体内异位构建组织工程化周围神经的实验研究 | 第44-57页 |
4.1 对象和方法 | 第44-47页 |
4.1.1 实验材料及试剂 | 第44页 |
4.1.2 实验试剂配制 | 第44页 |
4.1.3 实验仪器 | 第44页 |
4.1.4 实验方法 | 第44-47页 |
4.1.5 统计学分析 | 第47页 |
4.2 结果 | 第47-48页 |
4.2.1 PKH26标记ADSCs结果 | 第47页 |
4.2.2 组织工程化周围神经体外培养及观察 | 第47页 |
4.2.3 裸鼠皮下植入实验 | 第47-48页 |
4.3 讨论 | 第48-50页 |
4.3.1 PKH26标记ADSCs | 第48-49页 |
4.3.2 小动物活体成像系统分析 | 第49页 |
4.3.3 ADSCs与改良脱细胞神经支架在裸鼠皮下以为构建组织工程神经的可行性 | 第49-50页 |
4.4 小结 | 第50-51页 |
附图 | 第51-57页 |
结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-66页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第66-67页 |
综述 | 第67-75页 |
综述参考文献 | 第72-75页 |
致谢 | 第75-76页 |