| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-7页 |
| 1 绪论 | 第12-34页 |
| 1.1 农药的使用现状及检测方法 | 第12-13页 |
| 1.1.1 农药的使用现状及危害 | 第12-13页 |
| 1.1.2 农药残留的检测方法 | 第13页 |
| 1.2 氟啶胺和杀草强的性质、危害及检测方法 | 第13-16页 |
| 1.2.1 氟啶胺和杀草强的性质及危害 | 第13-14页 |
| 1.2.2 氟啶胺和杀草强的检测方法 | 第14-16页 |
| 1.3 荧光传感器 | 第16-32页 |
| 1.3.1 荧光传感器敏感材料研究 | 第17-19页 |
| 1.3.2 荧光传感器检测机理的研究 | 第19-23页 |
| 1.3.3 荧光传感器在农药残留检测方面的应用 | 第23-32页 |
| 1.4 本课题的研究目的意义、主要研究内容及其创新点 | 第32-34页 |
| 1.4.1 研究目的及意义 | 第32页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第32-33页 |
| 1.4.3 创新点 | 第33-34页 |
| 2 卟啉敏感材料的合成、表征及其性质研究 | 第34-60页 |
| 2.1 前言 | 第34页 |
| 2.2 实验部分 | 第34-41页 |
| 2.2.1 实验药品 | 第34-35页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第35页 |
| 2.2.3 系列卟啉的合成与纯化 | 第35-41页 |
| 2.2.4 卟啉的表征 | 第41页 |
| 2.2.5 荧光光谱法测定 | 第41页 |
| 2.2.6 密度泛函理论分析 | 第41页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第41-58页 |
| 2.3.1 卟啉的表征 | 第41-49页 |
| 2.3.2 卟啉分子与氟啶胺的相互作用研究 | 第49-53页 |
| 2.3.3 理论计算及分析 | 第53-58页 |
| 2.4 本章小结 | 第58-60页 |
| 3 纳米量子点的制备、表征以及筛选 | 第60-78页 |
| 3.1 引言 | 第60-61页 |
| 3.2 实验 | 第61-64页 |
| 3.2.1 实验药品 | 第61-62页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第62页 |
| 3.2.3 量子点的制备 | 第62-63页 |
| 3.2.4 量子点的表征 | 第63-64页 |
| 3.2.5 氟啶胺对量子点荧光的猝灭作用 | 第64页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第64-77页 |
| 3.3.1 CdS QDs的表征 | 第64-65页 |
| 3.3.2 ZnS:Mn QDs的表征 | 第65-66页 |
| 3.3.3 CdTe QDs的表征 | 第66-69页 |
| 3.3.4 N, S-CDs的表征 | 第69-73页 |
| 3.3.5 氟啶胺对各种QDs的荧光猝灭作用 | 第73-77页 |
| 3.4 本章小结 | 第77-78页 |
| 4 基于N,S-CDs与TMaPP的FRET荧光传感体系检测蔬菜中氟啶胺 | 第78-98页 |
| 4.1 引言 | 第78-81页 |
| 4.2 实验部分 | 第81-83页 |
| 4.2.1 实验药品与仪器 | 第81-82页 |
| 4.2.2 紫外光谱测定 | 第82页 |
| 4.2.3 荧光光谱测定 | 第82页 |
| 4.2.4 实际样品前处理与分析 | 第82页 |
| 4.2.5 高效液相色谱测定 | 第82-83页 |
| 4.2.6 两种检测方法显著性差异分析（t检验法） | 第83页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第83-96页 |
| 4.3.1 N,S-CDs和TMa PP的FRET体系的构建 | 第83-85页 |
| 4.3.2 实验条件的选择 | 第85-87页 |
| 4.3.3 氟啶胺与TMaPP的相互作用 | 第87-89页 |
| 4.3.4 基于FRET的N,S-CDs@TMaPP复合体系对氟啶胺的检测 | 第89-91页 |
| 4.3.5 传感器的稳定性、重现性和选择性研究 | 第91-92页 |
| 4.3.6 实际样品的检测 | 第92-93页 |
| 4.3.7 液相色谱法检测 | 第93-96页 |
| 4.3.8 两种检测方法的对比分析 | 第96页 |
| 4.4 本章小结 | 第96-98页 |
| 5 三种不同发射波长的CdTe QDs与卟啉的FRET荧光传感体系检测蔬菜中氟啶胺 | 第98-114页 |
| 5.1 引言 | 第98-99页 |
| 5.2 实验 | 第99-101页 |
| 5.2.1 实验药品与仪器 | 第99-100页 |
| 5.2.2 CdTe QDs和TMaPP的制备和表征 | 第100页 |
| 5.2.3 紫外光谱检测 | 第100页 |
| 5.2.4 荧光光谱检测 | 第100-101页 |
| 5.2.5 实际样品处理与分析 | 第101页 |
| 5.2.6 HPLC法测定实际样品中的氟啶胺 | 第101页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第101-111页 |
| 5.3.1 CdTe QDs@TMaPP体系FRET的构建 | 第101-103页 |
| 5.3.2 氟啶胺与TMaPP的相互作用 | 第103页 |
| 5.3.3 CdTe QDs@TMaPP体系对氟啶胺的检测 | 第103-106页 |
| 5.3.4 多种氟啶胺检测方法的对比分析 | 第106-107页 |
| 5.3.5 比率荧光传感器实验条件的优化 | 第107-108页 |
| 5.3.6 比率荧光传感器的构建及对氟啶胺的检测 | 第108-109页 |
| 5.3.7 比率荧光传感器的稳定性、重现性和选择性研究 | 第109-110页 |
| 5.3.8 比率荧光传感器对实际蔬菜样品中氟啶胺的检测 | 第110-111页 |
| 5.4 本章小结 | 第111-114页 |
| 6 基于N,S-CDs与Aptamers的生物荧光传感器的构建及其对氟啶胺的检测 | 第114-128页 |
| 6.1 引言 | 第114-116页 |
| 6.2 实验部分 | 第116-118页 |
| 6.2.1 实验药品与仪器 | 第116-117页 |
| 6.2.2 GO及Aptamers的表征 | 第117页 |
| 6.2.3 N,S-CDs与Aptamers荧光探针的构建及实验条件的优化 | 第117页 |
| 6.2.4 荧光光谱测定 | 第117页 |
| 6.2.5 实际样品前处理与分析 | 第117-118页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第118-125页 |
| 6.3.1 GO及Aptamers的表征 | 第118页 |
| 6.3.2 N,S-CDs与Aptamers荧光探针的构建及实验条件的优化 | 第118-119页 |
| 6.3.3 基于IFE效应的N,S-CDs@Aptamers与GO生物荧光传感器的构建 | 第119-120页 |
| 6.3.4 N,S-CDs@Aptamers@GO复合体系实验条件的优化 | 第120-122页 |
| 6.3.5 基于N,S-CDs@Aptamers@GO的生物荧光传感器对氟啶胺的检测 | 第122页 |
| 6.3.6 生物荧光传感器的稳定性、重现性和选择性研究 | 第122-123页 |
| 6.3.7 实际样品的检测 | 第123-125页 |
| 6.4 本章小结 | 第125-128页 |
| 7 基于IFE的AuNPs与CdTe QDs荧光传感体系检测水体中的杀草强 | 第128-146页 |
| 7.1 前言 | 第128-130页 |
| 7.2 实验 | 第130-131页 |
| 7.2.1 药品与仪器 | 第130-131页 |
| 7.2.2 AuNPs的制备及表征 | 第131页 |
| 7.2.3 紫外光谱法测定 | 第131页 |
| 7.2.4 荧光光谱法检测 | 第131页 |
| 7.2.5 实际样品的分析 | 第131页 |
| 7.2.6 高效液相色谱法测定 | 第131页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第131-143页 |
| 7.3.1 AuNPs光学性质与表征 | 第131-133页 |
| 7.3.2 AuNPs与杀草强的相互作用研究 | 第133-135页 |
| 7.3.3 杀草强与CdTe QDs的相互作用研究 | 第135-136页 |
| 7.3.4 实验条件的优化 | 第136-137页 |
| 7.3.5 基于IFE效应CdTe QDs@AuNPs复合体系对杀草强的检测 | 第137-138页 |
| 7.3.6 检测体系的稳定性、重现性和选择性研究 | 第138-139页 |
| 7.3.7 实际样品的检测 | 第139-140页 |
| 7.3.8 实际水质样品的HPLC法检测 | 第140-143页 |
| 7.4 本章小结 | 第143-146页 |
| 8 结论与展望 | 第146-150页 |
| 8.1 结论 | 第146-149页 |
| 8.2 展望 | 第149-150页 |
| 致谢 | 第150-152页 |
| 参考文献 | 第152-186页 |
| 附录 | 第186-199页 |
| A. 作者在攻读博士学位期间发表的论文目录 | 第186-187页 |
| B. 优化后的卟啉分子结构图 | 第187-191页 |
| C. 八种卟啉分子以及氟啶胺的Mulliken电荷分布表 | 第191-199页 |
