| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-7页 |
| 1 绪论 | 第12-42页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 生物传感器概述 | 第13-15页 |
| 1.3 金纳米粒子的制备及在生物传感器上的应用 | 第15-26页 |
| 1.3.1 金纳米粒子的合成 | 第16-18页 |
| 1.3.2 金纳米粒子的表面等离子体效应 | 第18-19页 |
| 1.3.3 金纳米粒子在生物传感器上的应用 | 第19-26页 |
| 1.4 量子点的制备及在传感器上的应用 | 第26-33页 |
| 1.4.1 量子点的制备 | 第27-28页 |
| 1.4.2 量子点的光学特性 | 第28页 |
| 1.4.3 量子点在传感器上的应用 | 第28-33页 |
| 1.5 植物酯酶的纯化及在传感器上的应用 | 第33-37页 |
| 1.5.1 植物酯酶的纯化 | 第33-34页 |
| 1.5.2 酶生物传感器概述 | 第34页 |
| 1.5.3 植物酯酶在酶生物传感器中的应用 | 第34-37页 |
| 1.6 本论文的研究目的及意义、主要研究内容、创新点 | 第37-42页 |
| 1.6.1 研究目的及意义 | 第37页 |
| 1.6.2 主要研究内容 | 第37-39页 |
| 1.6.3 创新点 | 第39-42页 |
| 2 AuNPs-RB纳米光学传感器的构建及作用机制研究 | 第42-62页 |
| 2.1 引言 | 第42-43页 |
| 2.2 实验部分 | 第43-45页 |
| 2.2.1 实验仪器与药品 | 第43-44页 |
| 2.2.2 硼氢化钠还原法制备AuNPs | 第44页 |
| 2.2.3 柠檬酸钠还原法AuNPs的合成 | 第44页 |
| 2.2.4 AuNPs的UV-vis、TEM、ZETA表征 | 第44页 |
| 2.2.5 实验方法 | 第44页 |
| 2.2.6 实际样品的制备 | 第44-45页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第45-61页 |
| 2.3.1 硼氢化钠还原法制备AuNPs的UV–vis、TEM、ZETA表征 | 第45-46页 |
| 2.3.2 柠檬酸钠还原法制备AuNPs的UV–vis、TEM、ZETA表征 | 第46-48页 |
| 2.3.3 基于FRET构建AuNPs-RB纳米光学生物传感器及检测原理探讨 | 第48-55页 |
| 2.3.4 分析条件的优化 | 第55-57页 |
| 2.3.5 AuNPs-RB荧光共振能量转移体系对不同浓度杀螟丹的荧光检测 | 第57-58页 |
| 2.3.6 干扰实验 | 第58-59页 |
| 2.3.7 实际样品中杀螟丹的检测 | 第59-61页 |
| 2.4 本章小结 | 第61-62页 |
| 3 AuNPs-QDs纳米光学传感器的构建及作用机制研究 | 第62-80页 |
| 3.1 前言 | 第62-63页 |
| 3.2 实验部分 | 第63-65页 |
| 3.2.1 实验仪器与药品 | 第63-64页 |
| 3.2.2 柠檬酸钠还原法制备AuNPs | 第64页 |
| 3.2.3 GSH修饰的水溶性CdTe QDs的合成 | 第64页 |
| 3.2.4 AuNPs的UV-vis、TEM、ZETA表征 | 第64页 |
| 3.2.5 CdTe QDs的UV-vis、Fluorescence、ZETA、TEM表征 | 第64页 |
| 3.2.6 实验方法 | 第64-65页 |
| 3.2.7 实际样品的制备 | 第65页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第65-79页 |
| 3.3.1 柠檬酸钠还原法制备AuNPs的UV–vis、TEM、ZETA表征 | 第65页 |
| 3.3.2 GSH修饰的水溶性CdTe QDs的UV–vis、Fluorescence、ZETA表征 | 第65-68页 |
| 3.3.3 基于IFE构建的AuNPs-QDs纳米光学传感器及其检测原理 | 第68-70页 |
| 3.3.4 乙醇溶剂对检测系统的影响研究 | 第70-72页 |
| 3.3.5 反应条件的优化 | 第72-74页 |
| 3.3.6 AuNPs纳米光学传感器对不同浓度氰草津的比色检测 | 第74-75页 |
| 3.3.7 AuNPs-QDs纳米荧光传感器对不同浓度氰草津的荧光检测 | 第75-76页 |
| 3.3.8 干扰实验 | 第76-78页 |
| 3.3.9 实际样品中氰草津的检测 | 第78-79页 |
| 3.3.10 与气相色谱法对比 | 第79页 |
| 3.4 本章小结 | 第79-80页 |
| 4 PLaE光学生物传感器的构建及作用机制研究 | 第80-106页 |
| 4.1 引言 | 第80-81页 |
| 4.2 实验部分 | 第81-84页 |
| 4.2.1 实验仪器与药品 | 第81页 |
| 4.2.2 PLaE粗酶液的制备 | 第81-82页 |
| 4.2.3 TPP用于PLaE纯化的影响因素研究 | 第82页 |
| 4.2.4 PLaE酶活测定 | 第82页 |
| 4.2.5 蛋白含量测定 | 第82页 |
| 4.2.6 响应曲面法优化PLaE纯化工艺 | 第82-83页 |
| 4.2.7 纯化PLaE的SDS-PAGE凝胶电泳、荧光表征 | 第83页 |
| 4.2.8 杀螟硫磷的检测 | 第83页 |
| 4.2.9 实际样品的制备 | 第83-84页 |
| 4.2.10 荧光淬灭法研究PLaE与杀螟硫磷之间的作用机制 | 第84页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第84-104页 |
| 4.3.1 硫酸铵饱和度对于PLaE纯化的影响 | 第84-85页 |
| 4.3.2 不同粗酶液与叔丁醇比例对PLaE纯化的影响 | 第85-86页 |
| 4.3.3 温度对PLaE纯化的影响 | 第86-87页 |
| 4.3.4 pH对于PLaE纯化的影响 | 第87-88页 |
| 4.3.5 响应曲面设计回归方程的建立及显著性检查 | 第88-90页 |
| 4.3.6 响应面分析与优化 | 第90-93页 |
| 4.3.7 最佳工艺的验证 | 第93-94页 |
| 4.3.8 纯化PLaE的SDS-PAGE凝胶电泳、荧光表征 | 第94-95页 |
| 4.3.9 杀螟硫磷检测条件的优化 | 第95-98页 |
| 4.3.10 PLaE光学传感器对不同浓度杀螟硫磷的荧光检测 | 第98-99页 |
| 4.3.11 干扰实验 | 第99-100页 |
| 4.3.12 实际样品中杀螟硫磷的检测 | 第100-101页 |
| 4.3.13 杀螟硫磷对PLaE荧光淬灭类型的验证 | 第101-102页 |
| 4.3.14 杀螟硫磷与PLaE之间的结合参数、热力学参数和作用力类型 | 第102-104页 |
| 4.4 本章小结 | 第104-106页 |
| 5 AuNPs-PLaE纳米光学传感器的构建及作用机制研究 | 第106-122页 |
| 5.1 引言 | 第106-107页 |
| 5.2 实验部分 | 第107-108页 |
| 5.2.1 实验仪器与药品 | 第107页 |
| 5.2.2 柠檬酸钠还原法制备AuNPs | 第107页 |
| 5.2.3 壳聚糖还原法制备AuNPs | 第107-108页 |
| 5.2.5 AuNPs的UV-vis、TEM、ZETA表征 | 第108页 |
| 5.2.6 实验方法 | 第108页 |
| 5.2.7 实际样品的制备及检测 | 第108页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第108-120页 |
| 5.3.1 柠檬酸钠还原法制备AuNPs的UV-vis、TEM、ZETA表征 | 第108页 |
| 5.3.2 壳聚糖还原法制备AuNPs的UV–vis、TEM、ZETA表征 | 第108-110页 |
| 5.3.3 基于酶抑制的AuNPs-PLaE纳米光学生物传感器及其检测原理 | 第110-112页 |
| 5.3.4 ATCH及AChE加入前后AuNPs的TEM图 | 第112-113页 |
| 5.3.5 条件优化 | 第113-117页 |
| 5.3.6 AuNPs-PLaE纳米光学传感器对不同浓度杀螟硫磷的比色检测 | 第117-118页 |
| 5.3.7 抗干扰实验 | 第118-119页 |
| 5.3.8 实际样品中杀螟硫磷的检测 | 第119-120页 |
| 5.4 本章小结 | 第120-122页 |
| 6 总结与展望 | 第122-126页 |
| 6.1 总结 | 第122-123页 |
| 6.2 展望 | 第123-126页 |
| 致谢 | 第126-128页 |
| 参考文献 | 第128-148页 |
| 附录 | 第148-149页 |
| A 作者在攻读博士学位期间发表的论文目录 | 第148-149页 |
| B 作者在攻读博士学位期间参与的项目 | 第149页 |
