| 摘要 | 第4-9页 |
| Abstract | 第9-14页 |
| 英文缩略语 | 第15-24页 |
| 第一部分：脑发育不同阶段母体甲状腺激素缺乏对后代神经精神发育影响的动物研究 | 第24-47页 |
| 1 前言 | 第24-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-36页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第26页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第26-27页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-35页 |
| 2.2.1 造模方法 | 第27-29页 |
| 2.2.2 母鼠眶后采血方法 | 第29页 |
| 2.2.3 仔鼠取脑过程 | 第29-30页 |
| 2.2.4 ELISA法测定母鼠甲功、仔鼠甲功和仔鼠脑组织中甲状腺激素含 | 第30页 |
| 2.2.5 翻身校正反射(Righting reflex) | 第30-31页 |
| 2.2.6 触须引发的前肢放置试验(Vibrissae-elicited forelimb placing test) | 第31页 |
| 2.2.7 长时程增强（Long-term potentiation, LTP) | 第31-32页 |
| 2.2.8 旷场实验（Open field test) | 第32-33页 |
| 2.2.9 高架十字迷宫（Elevated plus maze) | 第33页 |
| 2.2.10 高架零迷宫（Elevated zero maze) | 第33-34页 |
| 2.2.11 旋转加速实验（Rotarod test) | 第34页 |
| 2.2.12 水迷宫(Morris water maze) | 第34-35页 |
| 2.2.13 强迫游泳（Forced swimming test) | 第35页 |
| 2.3 统计学处理 | 第35-36页 |
| 3 结果 | 第36-44页 |
| 3.1 造模情况 | 第36页 |
| 3.2 后代一般情况 | 第36-37页 |
| 3.3 后代PND10甲功 | 第37-38页 |
| 3.4 仔鼠PND5、10大脑皮层发育相关行为学实验 | 第38-39页 |
| 3.5 仔鼠PND10长时程增强 | 第39-40页 |
| 3.6 成年仔鼠自主活动及焦虑行为相关行为学实验 | 第40-42页 |
| 3.7 成年仔鼠抑郁相关行为学实验 | 第42页 |
| 3.8 成年仔鼠运动及学习记忆相关行为学实验 | 第42-44页 |
| 4 讨论 | 第44-46页 |
| 5 结论 | 第46-47页 |
| 第二部分：脑发育第一阶段母体甲状腺激素异常对后代神经精神发育影响的动物研究 | 第47-79页 |
| 1 前言 | 第47-49页 |
| 2 材料与方法 | 第49-62页 |
| 2.1 实验材料 | 第49-51页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第49页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第49-50页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第50-51页 |
| 2.2 实验方法 | 第51-60页 |
| 2.2.1 动物造模过程及处理时间点 | 第51-52页 |
| 2.2.2 甲功测定 | 第52页 |
| 2.2.3 水迷宫(Morris water maze) | 第52页 |
| 2.2.4 条件恐惧实验（Fear conditioning test) | 第52-53页 |
| 2.2.5 长时程增强(Long-term potentiation) | 第53页 |
| 2.2.6 镀银染色 | 第53-54页 |
| 2.2.7 实时定量PCR (Quantitative real-time PCR) | 第54-59页 |
| 2.2.8 Western Blotting | 第59-60页 |
| 2.3统计学处理 | 第60-62页 |
| 3 结果 | 第62-75页 |
| 3.1 造模情况 | 第62-63页 |
| 3.1.1 妊娠大鼠GD10天血清TT4和TSH水平 | 第62页 |
| 3.1.2 妊娠大鼠GD18天血清TT4和TSH水平 | 第62-63页 |
| 3.2 后代仔鼠PND10血清和大脑皮层组织匀浆TT4水平 | 第63页 |
| 3.3 仔鼠PND40水迷宫结果 | 第63-64页 |
| 3.4 仔鼠PND40条件恐惧实验 | 第64-65页 |
| 3.5 仔鼠PND40长时程增强 | 第65-66页 |
| 3.6 PND40天仔鼠神经元轴突镀银染色 | 第66-67页 |
| 3.7 real-time PCR结果 | 第67-74页 |
| 3.7.1 P40天仔鼠海马组织甲状腺激素反应基因mRNA的表达 | 第67-69页 |
| 3.7.2 P40天仔鼠皮层组织甲状腺激素反应基因mRNA表达 | 第69页 |
| 3.7.3 P40天仔鼠海马组织神经营养因子mRNA表达比较 | 第69-70页 |
| 3.7.4 P40天仔鼠皮层组织神经营养因子mRNA表达比较 | 第70页 |
| 3.7.5 P40天仔鼠海马组织神经导向因子mRNA表达比较 | 第70-71页 |
| 3.7.6 P40天仔鼠皮层组织神经导向因子mRNA表达比较 | 第71-72页 |
| 3.7.7 P40天仔鼠海马组织GTPase家族因子mRNA表达比较 | 第72页 |
| 3.7.8 P40天仔鼠皮层组织GTPase家族因子mRNA表达比较 | 第72-74页 |
| 3.8 Western blot结果 | 第74-75页 |
| 3.8.1 P40天仔鼠海马组织GTPase家族因子蛋白表达比较 | 第74页 |
| 3.8.2 P40天仔鼠皮层组织GTPase家族因子蛋白表达比较 | 第74-75页 |
| 4 讨论 | 第75-78页 |
| 5 结论 | 第78-79页 |
| 第三部分:脑发育第一阶段母体甲状腺激素缺乏后代GD17天胎脑大脑皮层转录组分析 | 第79-98页 |
| 1 前言 | 第79-80页 |
| 2 材料和方法 | 第80-85页 |
| 2.1 实验材料 | 第80页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第80页 |
| 2.1.2 主要实验仪器 | 第80页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第80页 |
| 2.2 实验方法 | 第80-84页 |
| 2.2.1 动物造模过程及处理时间点 | 第80-81页 |
| 2.2.2 石蜡切片 | 第81页 |
| 2.2.3 尼氏染色（Nissl staining) | 第81页 |
| 2.2.4 激光捕获显微切害lj (Laser capture microdissection) | 第81-82页 |
| 2.2.5 微量RNA提取 | 第82-83页 |
| 2.2.6 RNA质量检测 | 第83页 |
| 2.2.7 转录组测序（RNA sequencing, RNA-seq) | 第83-84页 |
| 2.3 统计学分析 | 第84-85页 |
| 3 结果 | 第85-94页 |
| 3.1 造模情况 | 第85页 |
| 3.2 尼氏染色 | 第85-86页 |
| 3.3 RNA样品处理 | 第86-93页 |
| 3.3.1 LCM后微量RNA提取 | 第86页 |
| 3.3.2 第一次总RNA混样样品质检结果 | 第86-88页 |
| 3.3.3 Trizol法提取4%多聚甲醛固定后皮层组织总RNA | 第88页 |
| 3.3.4 第二次总RNA质检结果 | 第88页 |
| 3.3.5 重新造模、新鲜脑组织体视显微镜下分离皮层，Trizol法提取总RNA | 第88-89页 |
| 3.3.6 第三次质检结果 | 第89页 |
| 3.3.7 测序结果 | 第89-93页 |
| 3.4 仔鼠PND10皮层和海马组织甲状腺激素反应基因表达 | 第93-94页 |
| 4 讨论 | 第94-97页 |
| 5 结论 | 第97-98页 |
| 本论文创新性的自我评价 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-105页 |
| 文献综述 | 第105-117页 |
| 参考文献 | 第112-117页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第117-118页 |
| 致谢 | 第118-119页 |
| 个人简历 | 第119页 |
