缩略词表 | 第7-8页 |
中文摘要 | 第8-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
第一部分 前言综述 | 第11-20页 |
1 交替途径的发现 | 第11页 |
2 交替氧化酶(alternative oxidase,AOX) | 第11-14页 |
2.1 交替氧化酶蛋白及其结构 | 第11-12页 |
2.2 交替氧化酶的编码基因及表达 | 第12-13页 |
2.3 AOX活性调节 | 第13-14页 |
3 交替途径和光合作用 | 第14-16页 |
3.1 交替途径消耗叶绿体内过多的还原物质 | 第15页 |
3.2 优化光合作用碳的同化 | 第15页 |
3.3 保护叶绿体避免光抑制 | 第15-16页 |
4 交替途径对环境胁迫的响应以及与ROS之间的关系 | 第16-17页 |
5 交替途径的生理学功能 | 第17-18页 |
6 课题的提出 | 第18-20页 |
第二部分 拟南芥生长过程中交替途径运行规律及其与光合呼吸之间的关系研究 | 第20-26页 |
1 材料与方法 | 第20-22页 |
1.1 材料 | 第20-21页 |
1.2 方法 | 第21-22页 |
1.2.1 拟南芥种子培养 | 第21页 |
1.2.2 呼吸的检测方法 | 第21页 |
1.2.3 叶片CO_2固定速率的测定 | 第21页 |
1.2.4 叶片叶绿素含量的测定 | 第21-22页 |
2 实验结果与分析 | 第22-24页 |
2.1 拟南芥生长过程中呼吸和光合的变化 | 第22页 |
2.2 光照周期和强度对拟南芥叶片光合和呼吸的影响 | 第22-24页 |
2.3 叶片叶绿素含量测定以及形态的变化 | 第24页 |
3 讨论 | 第24-26页 |
第三部分 交替途径在逆境下对光合组织的保护作用 | 第26-37页 |
1 材料与方法 | 第27-29页 |
1.1 材料 | 第27页 |
1.2 方法 | 第27-29页 |
1.2.1 植物的培养和处理 | 第27页 |
1.2.2 呼吸的检测方法 | 第27页 |
1.2.3 叶片CO_2固定速率的测定 | 第27-28页 |
1.2.4 相对含水量(RWC)的测定 | 第28页 |
1.2.5 叶片电子渗透的测定 | 第28页 |
1.2.6 TBARS测定 | 第28页 |
1.2.7 H_2O_2含量的测量 | 第28页 |
1.2.8 拟南芥根尖活性氧(ROS)的检测 | 第28-29页 |
1.2.9 叶绿素荧光测定 | 第29页 |
1.2.10 拟南芥线粒体蛋白提取及Western Blotting | 第29页 |
2 实验结果与讨论 | 第29-34页 |
2.1 不同水平AOX突变体对低温环境下呼吸和光合的响应 | 第29-31页 |
2.2 交替途径提升了拟南芥的抗冻性 | 第31页 |
2.3 逆境条件交替呼吸途径清除活性氧(ROS)的作用 | 第31-33页 |
2.4 低温对拟南芥叶片PSⅡ系统光合性能的影响 | 第33页 |
2.5 低温胁迫下拟南芥叶片交替氧化酶的表达 | 第33-34页 |
3 讨论 | 第34-37页 |
第四部分 光照下交替呼吸途径对光合代谢及电子传递链的影响 | 第37-46页 |
1 实验材料和方法 | 第37-38页 |
1.1 材料 | 第37页 |
1.2 方法 | 第37-38页 |
1.2.1 植物组织碳水化合物的提取和测定 | 第37-38页 |
1.2.2 淀粉含量的测定 | 第38页 |
1.2.3 拟南芥线粒体蛋白提取及Western Blotting | 第38页 |
1.2.4 叶绿素荧光的检测 | 第38页 |
2 实验结果与分析 | 第38-43页 |
2.1 低温和强光对拟南芥叶片光合代谢的影响 | 第38-40页 |
2.2 低温和强光下拟南芥叶片AOX蛋白表达 | 第40页 |
2.3 强光下拟南芥叶片光合电子传递链的变化 | 第40-43页 |
3 讨论 | 第43-46页 |
第五部分 结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-54页 |
硕士期间发表的论文 | 第54-55页 |
致谢 | 第55页 |