| 致谢 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩略语表 | 第11-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-34页 |
| 1.1 梨果实香气物质与特征香气成分 | 第16-20页 |
| 1.2. 挥发性物质分析方法 | 第20-22页 |
| 1.2.1 固相微萃取法技术 | 第20-21页 |
| 1.2.2 电子鼻 | 第21-22页 |
| 1.3. 果实香气的生物合成 | 第22-26页 |
| 1.3.1 脂肪酸代谢途径 | 第23-24页 |
| 1.3.2 氨基酸代谢途径 | 第24-25页 |
| 1.3.3 萜类途径 | 第25-26页 |
| 1.3.4 其他生物合成途径 | 第26页 |
| 1.4 香气生物合成代谢途径相关酶研究 | 第26-30页 |
| 1.4.1 脂氧合酶 | 第26-28页 |
| 1.4.2 醇酰基转移酶 | 第28-29页 |
| 1.4.3 乙醇脱氢酶 | 第29-30页 |
| 1.4.4 氢过氧化物裂解酶 | 第30页 |
| 1.5 影响果实挥发性物质形成的因子 | 第30-32页 |
| 1.5.1 种类和品种 | 第30-31页 |
| 1.5.2 成熟度 | 第31-32页 |
| 1.5.3 栽培条件和采后处理 | 第32页 |
| 1.6 研究目标与内容 | 第32-34页 |
| 第二章 SPME/GC/MS技术条件的优化 | 第34-42页 |
| 2.1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第34页 |
| 2.1.2 试验仪器 | 第34-35页 |
| 2.1.3 SPME萃取效果的单因素实验 | 第35页 |
| 2.1.4 气相色谱及质谱条件 | 第35-36页 |
| 2.2 结果与分析 | 第36-40页 |
| 2.2.1 萃取纤维头的选择 | 第36-37页 |
| 2.2.2 最佳萃取样品量的选择 | 第37-38页 |
| 2.2.3 最优萃取温度的选择 | 第38-39页 |
| 2.2.4 最优萃取时间的选择 | 第39-40页 |
| 2.3 讨论 | 第40-42页 |
| 第三章 利用电子鼻对不同梨品种进行区分的初步研究 | 第42-49页 |
| 3.1 材料与方法 | 第42-43页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第42-43页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第43页 |
| 3.2 结果与分析 | 第43-47页 |
| 3.2.1 传感器对梨挥发性物质反应值差异分析 | 第43-45页 |
| 3.2.2 梨品种挥发性成分的主成分分析(PCA) | 第45-46页 |
| 3.2.3 梨品种挥发性成分的判别因子分析(DFA) | 第46-47页 |
| 3.3 讨论 | 第47-49页 |
| 第四章 梨不同系统品种果实挥发性成分鉴定 | 第49-70页 |
| 4.1 材料与方法 | 第50-53页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第50-52页 |
| 4.1.2 不同梨品种果实果肉挥发性物质的测定 | 第52页 |
| 4.1.3 挥发性组分的定性与定量分析 | 第52页 |
| 4.1.4 统计分析 | 第52-53页 |
| 4.2 结果与分析 | 第53-68页 |
| 4.2.1 不同品种梨果实挥发性物质组成分析 | 第53-60页 |
| 4.2.2 不同品种梨果实中不同类型挥发性化合物分析 | 第60-63页 |
| 4.2.3 各品种中主要挥发性物质及特征香气成分分析 | 第63-67页 |
| 4.2.4 基于特征香气成分的主成分分析 | 第67-68页 |
| 4.3 讨论 | 第68-70页 |
| 第五章 两个秋子梨品种果实后熟过程中挥发性组分分析 | 第70-78页 |
| 5.1 材料与方法 | 第70-71页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第70页 |
| 5.1.2 方法 | 第70-71页 |
| 5.1.2.1 果实硬度测定 | 第70-71页 |
| 5.1.2.2 果实乙烯释放量测定 | 第71页 |
| 5.1.2.3 挥发性组分的定性与定量分析 | 第71页 |
| 5.2. 结果与分析 | 第71-76页 |
| 5.2.1 果实后熟过程中硬度及乙烯释放量变化 | 第71-72页 |
| 5.2.2 秋子梨果实后熟过程中挥发性组分的变化 | 第72-75页 |
| 5.2.3 秋子梨品种果实后熟过程中特征香气成分的变化 | 第75-76页 |
| 5.3 讨论 | 第76-78页 |
| 第六章 ‘苹香梨’果实后熟过程中挥发性组分分析及相关基因表达研究 | 第78-94页 |
| 6.1 材料与方法 | 第78-82页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第78-79页 |
| 6.1.2 方法 | 第79-82页 |
| 6.1.2.1 果实硬度测定 | 第79页 |
| 6.1.2.2 果实乙烯释放量测定 | 第79页 |
| 6.1.2.3 挥发性组分的定性与定量分析 | 第79页 |
| 6.1.2.4 无损伤电子鼻检测 | 第79页 |
| 6.1.2.5 ‘苹香梨’果实果肉总RNA的提取 | 第79-80页 |
| 6.1.2.6 DNase Ⅰ处理 | 第80页 |
| 6.1.2.7 逆转录 | 第80页 |
| 6.1.2.8 Real-time PCR反应体系及程序 | 第80-82页 |
| 6.1.2.9 统计分析 | 第82页 |
| 6.2. 结果与分析 | 第82-90页 |
| 6.2.1 果实后熟过程中硬度及乙烯释放量变化 | 第82-83页 |
| 6.2.2 果实挥发性组分的变化 | 第83-84页 |
| 6.2.3 ‘苹香梨’后熟过程中特征香气成分的变化 | 第84-85页 |
| 6.2.4 ‘苹香梨’后熟过程中挥发性物质的无损伤电子鼻检测 | 第85-87页 |
| 6.2.5 乙烯生物合成相关基因在‘苹香梨’后熟过程中的表达 | 第87-89页 |
| 6.2.6 酯类物质生物合成相关基因在‘苹香梨’后熟过程中的表达 | 第89-90页 |
| 6.3 讨论 | 第90-94页 |
| 第七章 1-甲基环丙烯对‘软儿梨’果实香气及酯类物质合成相关基因的影响 | 第94-109页 |
| 7.1 材料与方法 | 第94-96页 |
| 7.1.1 试验材料与处理 | 第94-95页 |
| 7.1.2 方法 | 第95-96页 |
| 7.1.2.1 果实硬度测定 | 第95页 |
| 7.1.2.2 果实乙烯释放量测定 | 第95页 |
| 7.1.2.3 果肉挥发性物质的测定及定性与定量 | 第95页 |
| 7.1.2.4 ‘软儿梨’果实果肉总RNA的提取 | 第95页 |
| 7.1.2.5 DNaseⅠ处理 | 第95页 |
| 7.1.2.6 逆转录 | 第95页 |
| 7.1.2.7 Real-time PCR反应体系及程序 | 第95-96页 |
| 7.1.2.8 统计分析 | 第96页 |
| 7.2 结果与分析 | 第96-106页 |
| 7.2.1 ‘软儿梨’果实后熟过程中硬度、色泽及乙烯释放量变化 | 第96-97页 |
| 7.2.2 果实挥发性组分的变化 | 第97-103页 |
| 7.2.3 1-MCP处理对‘软儿梨’果实酯类物质生物合成相关基因表达的影响 | 第103-106页 |
| 7.3 讨论 | 第106-109页 |
| 第八章 小结与展望 | 第109-111页 |
| 参考文献 | 第111-126页 |
| 作者简历及在学期间取得的科研成果 | 第126-127页 |
