摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-13页 |
上篇 文献综述 | 第14-55页 |
第一章 我国作物秸秆利用现状及秸秆还田应用前景 | 第15-27页 |
1 秸秆的成分 | 第15-16页 |
1.1 纤维素 | 第15页 |
1.2 半纤维素 | 第15-16页 |
1.3 木质素 | 第16页 |
2 秸秆利用的方式和应用现状 | 第16-18页 |
2.1 作为肥料资源 | 第16-17页 |
2.2 作为燃料资源 | 第17页 |
2.3 作为饲料资源 | 第17页 |
2.4 作为工业原料 | 第17-18页 |
3 秸秆还田 | 第18-21页 |
3.1 秸秆还田的方式 | 第18页 |
3.2 秸秆还田的优势 | 第18-19页 |
3.3 秸秆还田存在的问题 | 第19-21页 |
4 秸秆微生物降解 | 第21-23页 |
4.1 降解秸秆的微生物种类 | 第21-22页 |
4.2 微生物降解原理 | 第22页 |
4.3 微生物降解秸秆应用 | 第22-23页 |
参考文献 | 第23-27页 |
第二章 木质纤维素降解酶类研究进展 | 第27-41页 |
1 半纤维素酶 | 第27-30页 |
1.1 半纤维素降解 | 第27-28页 |
1.2 半纤维素酶的结构及功能 | 第28-30页 |
1.3 碳水化合物结合模块(CBM)的结构及功能 | 第30页 |
2 纤维素酶 | 第30-32页 |
2.1 纤维素的降解 | 第30-31页 |
2.2 纤维素酶结构 | 第31页 |
2.3 纤维素酶水解机制 | 第31-32页 |
3 木质素降解酶 | 第32-33页 |
3.1 木质素降解酶种类 | 第32-33页 |
3.2 木质素降解机理 | 第33页 |
4 纤维小体 | 第33-36页 |
4.1 产纤维小体的微生物 | 第33-34页 |
4.2 纤维小体的结构 | 第34页 |
4.3 不同微生物产生的脚手架蛋白(scaffolding protein) | 第34-35页 |
4.4 粘结-锚定的特异性 | 第35-36页 |
参考文献 | 第36-41页 |
第三章 寡糖激发子的生物学功能 | 第41-55页 |
1 植物先天免疫 | 第41-42页 |
2 PAMPs | 第42-43页 |
3 PRRs | 第43-44页 |
3.1 包含LRR序列的PRRs识别氨基酸PAMPs | 第43-44页 |
3.2 包含LysM域的PRRs识别寡糖PAMPs | 第44页 |
4 寡糖激发子 | 第44-49页 |
4.1 寡糖的定义与分类 | 第44页 |
4.2 典型寡糖 | 第44-45页 |
4.3 寡糖的功能 | 第45-49页 |
参考文献 | 第49-55页 |
下篇 研究内容 | 第55-139页 |
第一章 降解作物秸秆的芽孢杆菌筛选 | 第57-77页 |
1 材料与方法 | 第58-60页 |
1.1 实验材料 | 第58-59页 |
1.2 实验方法 | 第59-60页 |
2 结果与分析 | 第60-70页 |
2.1 30株芽孢杆菌的平板初筛 | 第60-62页 |
2.2 芽孢杆菌的复筛 | 第62-66页 |
2.3 液态发酵下菌株对秸秆的降解效果 | 第66-69页 |
2.4 盆栽模拟实验 | 第69-70页 |
3 讨论 | 第70-73页 |
参考文献 | 第73-77页 |
第二章 短小芽孢杆菌GBSW19在水稻-小麦轮作田降解秸秆效果的初步评估 | 第77-95页 |
1 材料与方法 | 第78-80页 |
1.1 实验材料 | 第78-79页 |
1.2 实验方法 | 第79-80页 |
2 结果与分析 | 第80-89页 |
2.1 菌株GBSW19的发酵 | 第80-81页 |
2.2 水稻-小麦轮作地中作物秸秆的降解情况 | 第81-83页 |
2.3 土壤pH变化规律 | 第83-84页 |
2.4 土壤养分含量及变化规律 | 第84-86页 |
2.5 秸秆还田对轮作地中下茬作物生长的影响 | 第86-89页 |
3 讨论 | 第89-92页 |
参考文献 | 第92-95页 |
第三章 短小芽孢杆菌GBSW19纤维素酶类基因的克隆表达与甘露聚糖酶Bpman5的酶学特性 | 第95-115页 |
1 材料与方法 | 第96-100页 |
1.1 实验材料 | 第96-98页 |
1.2 实验方法 | 第98-100页 |
2 结果与分析 | 第100-109页 |
2.1 Bacillus pumilus GBSW19中纤维素酶类编码基因的预测和克隆 | 第100-101页 |
2.2 表达载体的构建与蛋白表达 | 第101-102页 |
2.3 Bpman5生物信息学分析 | 第102-103页 |
2.4 Bpman5蛋白纯化与定量 | 第103-104页 |
2.5 Bpman5甘露聚糖酶酶学基本特性研究 | 第104-108页 |
2.6 Bpman5水解多糖底物和甘露寡糖的产物分析 | 第108-109页 |
3 讨论 | 第109-112页 |
参考文献 | 第112-115页 |
第四章 应用Bpman5制备甘露寡糖(MOS)及MOS在水稻和烟草上的激发子活性 | 第115-139页 |
1 材料与方法 | 第116-119页 |
1.1 实验材料 | 第116页 |
1.2 实验方法 | 第116-119页 |
2 结果与分析 | 第119-132页 |
2.1 不含多糖的甘露寡糖制备 | 第119-120页 |
2.2 寡糖制备条件的优化 | 第120-122页 |
2.3 甘露寡糖引起水稻和烟草叶片HR | 第122-123页 |
2.4 MOS诱导烟草叶片气孔关闭 | 第123-124页 |
2.5 MOS在水稻和烟草叶片引起H_2O_2的累积 | 第124页 |
2.6 MOS引发烟草保卫细胞Ca~(2+)内流 | 第124-125页 |
2.7 MOS引发烟草保卫细胞ROS和NO的累积 | 第125-127页 |
2.8 MOS引起烟草和水稻防卫相关基因上调表达 | 第127-129页 |
2.9 MOS诱导水稻和烟草抗性产生 | 第129-130页 |
2.10 MOS对水稻生长的影响 | 第130-132页 |
3 讨论 | 第132-135页 |
参考文献 | 第135-139页 |
全文总结与创新点 | 第139-141页 |
附录Ⅰ 菌株信息 | 第141-143页 |
附录Ⅱ 常用培养基和试剂配方 | 第143-145页 |
附录Ⅲ 纤维素酶、半纤维素酶基因序列 | 第145-151页 |
附录Ⅳ real-time PCR引物 | 第151-153页 |
攻读博士期间发表论文 | 第153-155页 |
致谢 | 第155页 |