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猪型布鲁氏菌外膜蛋白Omp31抗原决定簇的抗原性研究

摘要第3-4页
Abstract第4-5页
引言第10-12页
1 文献综述第12-26页
    1.1 布鲁氏菌疫情及危害第12-15页
        1.1.1 世界布鲁氏菌疫情第12-13页
        1.1.2 我国布鲁氏菌疫情第13-14页
        1.1.3 内蒙古布鲁氏菌疫情第14-15页
    1.2 布鲁氏菌的病原学特征第15-17页
        1.2.1 布鲁氏菌形态及生化特征第15页
        1.2.2 布鲁氏菌的基因组第15-16页
        1.2.3 布鲁氏菌的类型第16页
        1.2.4 布鲁氏菌的致病力及毒力基因第16-17页
    1.3 布鲁氏菌的诊断方法第17-18页
        1.3.1 血清学诊断方法第17-18页
        1.3.2 分子生物学诊断方法第18页
    1.4 布鲁氏菌的抗原第18-20页
        1.4.1 第一组外膜蛋白第19页
        1.4.2 第二组外膜蛋白第19页
        1.4.3 第三组外膜蛋白第19-20页
    1.5 2,4-二氧四氢蝶淀合成酶 BLS第20-22页
    1.6 布鲁氏菌的疫苗第22-25页
        1.6.1 弱毒活菌苗第22-23页
        1.6.2 灭活疫苗第23-24页
        1.6.3 组分苗第24页
        1.6.4 基因工程疫苗第24-25页
    1.7 研究内容及意义第25-26页
2 实验内容第26-49页
    2.1 实验材料第26-27页
        2.1.1 常用的试剂和试剂盒第26页
        2.1.2 实验菌株及载体第26-27页
    2.2 实验配方第27-30页
    2.3 主要实验器材及仪器第30-31页
        2.3.1 主要实验器材第30页
        2.3.2 主要实验仪器第30-31页
    2.4 实验方法第31-49页
        2.4.1 提取 pET28a 载体质粒第31-32页
        2.4.2 感受态细胞的制备第32页
        2.4.3 目的基因 omp31 的克隆第32-35页
        2.4.4 目的基因 omp31_(193-227)的克隆第35-38页
        2.4.5 目的基因 bls 的克隆第38-40页
        2.4.6 融合目的基因 omp31_(193-227)bls 的克隆第40-43页
        2.4.7 重组蛋白 rOmp31 的诱导表达及纯化第43-45页
        2.4.8 重组蛋白 rBLS 的诱导表达及纯化第45页
        2.4.9 重组蛋白 rOmp31BLS 的诱导表达及纯化第45页
        2.4.10 重组表达蛋白的 ELSIA 检测第45-47页
        2.4.11 重组表达蛋白的琼脂糖扩散第47-48页
        2.4.12 重组表达蛋白凝集实验第48-49页
3 结果第49-69页
    3.1 omp31 基因测序结果第49页
    3.2 Omp31 蛋白质分子的结构预测第49-53页
        3.2.1 软件在线预测第50页
        3.2.2 DNASTAR 生物软件预测与分析第50-53页
    3.3 pET28aomp31 重组质粒的构建结果第53-55页
        3.3.1 omp31 基因 PCR 扩增结果第53页
        3.3.2 pET28aomp31 重组质粒菌落 PCR 验证第53-54页
        3.3.3 pET28aomp31 重组质粒 PCR 验证第54页
        3.3.4 pET28aomp31 重组质粒双酶切验证第54-55页
        3.3.5 pET28aomp31 重组质粒基因序列测序结果第55页
    3.4 pET28aomp31_(193-227)重组质粒的构建结果第55-57页
        3.4.1 omp31_(193-227)基因表达片段的PCR 扩增结果第55页
        3.4.2 pET28aomp31_(193-227)重组质粒菌落 PCR 验证第55-56页
        3.4.3 pET28aomp31_(193-227)重组质粒 PCR 验证第56页
        3.4.4 pET28aomp31_(193-227)重组质粒双酶切验证第56-57页
        3.4.5 pET28aomp31_(193-227)重组质粒基因序列测序结果第57页
    3.5 pET28abls 重组质粒结果第57-59页
        3.5.1 bls 基因 PCR 扩增结果第57页
        3.5.2 pET28abls 重组质粒菌落 PCR 验证第57-58页
        3.5.3 pET28abls 重组质粒 PCR 验证第58页
        3.5.4 pET28abls 重组质粒双酶切验证第58-59页
        3.5.5 pET28abls 重组质粒基因序列测序结果第59页
    3.6 pET28aomp31_(193-227)bls 重组质粒的构建结果第59-61页
        3.6.1 rbls 基因 PCR 扩增结果第59页
        3.6.2 romp31_(193-227)基因PCR 扩增结果第59-60页
        3.6.3 pET28aomp31_(193-227) bls 重组质粒菌落 PCR 验证第60页
        3.6.4 pET28aomp31_(193-227)bls 重组质粒 PCR 验证第60-61页
        3.6.5 pET28aomp31_(193-227)bls 重组质粒基因序列测序结果第61页
    3.7 重组蛋白 Omp31 的诱导表达及纯化结果第61-62页
    3.8 重组蛋白 BLS 的诱导表达及纯化结果第62页
    3.9 重组融合蛋白 Omp31_(193-227)BLS 的诱导表达及纯化结果第62-63页
    3.10 ELISA 结果第63-67页
        3.10.1 抗原最佳浓度的确定第63-65页
        3.10.2 抗原与血清最佳作用时间的确定第65页
        3.10.3 血清与酶标二抗最佳作用时间的确定第65-66页
        3.10.4 底物显色液最佳作用时间的确定第66-67页
        3.10.5 最佳封闭温度的确定第67页
    3.11 琼脂糖扩散试验结果第67-68页
    3.12 凝集试验结果第68-69页
结论第69-71页
参考文献第71-78页
在学研究成果第78-79页
致谢第79页

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