| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 1 绪论 | 第19-39页 |
| 1.1 黑果枸杞研究现状 | 第20-22页 |
| 1.1.1 黑果枸杞简介 | 第20页 |
| 1.1.2 黑果枸杞的物质基础研究现状 | 第20-21页 |
| 1.1.3 黑果枸杞的生物活性及毒性研究 | 第21-22页 |
| 1.2 花色苷的研究概况 | 第22-28页 |
| 1.2.1 花色苷的化学结构 | 第23-24页 |
| 1.2.2 花色苷的性质 | 第24-25页 |
| 1.2.3 花色苷的稳定性 | 第25-26页 |
| 1.2.4 花色苷的生物活性 | 第26-28页 |
| 1.3 花色苷类化合物的富集方法 | 第28-31页 |
| 1.3.1 液液萃取 | 第29页 |
| 1.3.2 离子交换柱层析 | 第29-30页 |
| 1.3.3 固相萃取 | 第30-31页 |
| 1.4 花色苷类化合物的色谱分离方法 | 第31-35页 |
| 1.4.1 柱层析 | 第31-32页 |
| 1.4.2 高速逆流色谱 | 第32页 |
| 1.4.3 高效液相色谱 | 第32-34页 |
| 1.4.4 花色苷的正交纯化分离 | 第34-35页 |
| 1.5 花色苷类化合物的化学表征技术研究现状 | 第35-38页 |
| 1.5.1 高效液相色谱-二极管阵列检测器联用技术(HPLC-DAD) | 第35-36页 |
| 1.5.2 高效液相色谱-质谱联用技术(HPLC-MS) | 第36-38页 |
| 1.6 本论文的选题思路和研究内容 | 第38-39页 |
| 2 黑果枸杞提取物的粗分离 | 第39-55页 |
| 2.1 引言 | 第39-40页 |
| 2.2 实验部分 | 第40-42页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第40-41页 |
| 2.2.2 液相色谱及质谱条件 | 第41页 |
| 2.2.3 黑果枸杞提取物的前处理 | 第41-42页 |
| 2.2.4 黑果枸杞碱性组分的第一维反相色谱 | 第42页 |
| 2.2.5 pH示差法测定总花色苷的含量 | 第42页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第42-54页 |
| 2.3.1 黑果枸杞提取物SCX SPE前处理方法的可行性分析 | 第42-44页 |
| 2.3.2 黑果枸杞提取物SCX SPE前处理方法的开发 | 第44-47页 |
| 2.3.3 黑果枸杞提取物的前处理 | 第47-52页 |
| 2.3.4 黑果枸杞碱性组分的第一维反相色谱制备 | 第52-54页 |
| 2.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 3 黑果枸杞花色苷异构体的混合模式色谱纯化制备 | 第55-74页 |
| 3.1 引言 | 第55-56页 |
| 3.2 实验部分 | 第56-59页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第56-58页 |
| 3.2.2 液相色谱条件 | 第58-59页 |
| 3.2.3 样品制备 | 第59页 |
| 3.3 结果讨论 | 第59-73页 |
| 3.3.1 色谱柱筛选 | 第59-62页 |
| 3.3.2 流动相条件优化 | 第62-67页 |
| 3.3.2.1 流动相pH的影响 | 第62-63页 |
| 3.3.2.2 有机溶剂的影响 | 第63-64页 |
| 3.3.2.3 流动相离子强度的影响 | 第64-65页 |
| 3.3.2.4 酸性添加剂的优化 | 第65-67页 |
| 3.3.3 黑果枸杞碱性组分中花色苷异构体的纯化制备 | 第67-70页 |
| 3.3.4 化合物的化学结构鉴定 | 第70-73页 |
| 3.4 本章小结 | 第73-74页 |
| 4 黑果枸杞中难分离花色苷的亲水作用色谱纯化制备 | 第74-91页 |
| 4.1 引言 | 第74-75页 |
| 4.2 实验部分 | 第75-78页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第75-77页 |
| 4.2.2 液相色谱条件 | 第77页 |
| 4.2.3 样品制备 | 第77页 |
| 4.2.4 花色苷的亲水作用色谱纯化分离 | 第77-78页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第78-90页 |
| 4.3.1 花色苷馏分F1的反相色谱分离 | 第78-79页 |
| 4.3.2 花色苷馏分F1的混合模式色谱分离 | 第79-81页 |
| 4.3.3 花色苷馏分F1的亲水作用色谱分离 | 第81-87页 |
| 4.3.3.1 花色苷的亲水作用色谱分离方法开发 | 第81-84页 |
| 4.3.3.1.1 亲水色谱柱的筛选 | 第81-82页 |
| 4.3.3.1.2 流动相条件的优化 | 第82-84页 |
| 4.3.3.2 花色苷馏分F1的亲水作用色谱纯化分离 | 第84-87页 |
| 4.3.4 化合物的结构鉴定 | 第87-90页 |
| 4.4 本章小结 | 第90-91页 |
| 5 高效液相色谱-二极管阵列检测器/串联质谱法分离鉴定黑果枸杞花色苷 | 第91-110页 |
| 5.1 引言 | 第91-92页 |
| 5.2 实验部分 | 第92-94页 |
| 5.2.1 仪器与试剂 | 第92-93页 |
| 5.2.2 液相色谱及质谱条件 | 第93-94页 |
| 5.2.3 样品制备 | 第94页 |
| 5.2.4 目标花色苷的纯化制备 | 第94页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第94-109页 |
| 5.3.1 花色苷类化合物的质谱裂解规律 | 第94-98页 |
| 5.3.2 花色苷顺反式异构体的鉴定 | 第98-102页 |
| 5.3.3 黑果枸杞花色苷的系统表征 | 第102-106页 |
| 5.3.4 表征方法的验证 | 第106-109页 |
| 5.4 本章小结 | 第109-110页 |
| 6 黑果枸杞中非花色苷成分的纯化制备及黑果枸杞生物活性的初探 | 第110-131页 |
| 6.1 引言 | 第110-111页 |
| 6.2 实验部分 | 第111-113页 |
| 6.2.1 仪器与试剂 | 第111-112页 |
| 6.2.2 黑果枸杞碱性组分中生物碱的纯化制备 | 第112页 |
| 6.2.2.1 碱性组分的第一维制备方法 | 第112页 |
| 6.2.2.2 生物碱馏分F2的制备方法 | 第112页 |
| 6.2.2.3 生物碱馏分F3的制备方法 | 第112页 |
| 6.2.2.4 生物碱馏分F4的制备方法 | 第112页 |
| 6.2.3 黑果构杞酸/中性组分的制备 | 第112-113页 |
| 6.2.4 制备馏分及化合物的液相分析方法 | 第113页 |
| 6.2.5 黑果枸杞中化学成分的活性初探 | 第113页 |
| 6.2.6 数据处理 | 第113页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第113-130页 |
| 6.3.1 黑果枸杞碱性组分中生物碱类化合物的纯化制备 | 第113-123页 |
| 6.3.1.1 生物碱馏分的确定 | 第113-115页 |
| 6.3.1.2 生物碱馏分F2的纯化制备及化合物结构鉴定 | 第115-118页 |
| 6.3.1.3 生物碱馏分F3的纯化制备及化合物结构鉴定 | 第118-122页 |
| 6.3.1.4 生物碱馏分F4的纯化制备及化合物结构鉴定 | 第122-123页 |
| 6.3.2 黑果枸杞酸/中性组分的纯化制备 | 第123-127页 |
| 6.3.3 黑果枸杞中制备化合物的活性初探 | 第127-130页 |
| 6.4 本章小结 | 第130-131页 |
| 7 结论与展望 | 第131-133页 |
| 7.1 结论 | 第131-132页 |
| 7.2 创新点 | 第132页 |
| 7.3 展望 | 第132-133页 |
| 参考文献 | 第133-142页 |
| 致谢 | 第142-143页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第143-144页 |
| 作者简介 | 第144页 |
