| 概述 | 第8-11页 |
| 1 生物固氮概述 | 第8-9页 |
| 2 根瘤菌—豆科植物共生固氮体系的建立 | 第9-10页 |
| 3 本论文研究概要 | 第10-11页 |
| 第一章 DGDG合成酶基因MtDGD1在蒺藜苜蓿共生固氮中的功能研究 | 第11-63页 |
| 摘要 | 第11-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 缩略语表 | 第13-14页 |
| 1 前言 | 第14-24页 |
| 1.1 根瘤共生体膜的重要功能 | 第14页 |
| 1.2 半乳糖脂的生物学功能、结构与合成 | 第14-20页 |
| 1.2.1 半乳糖脂（MGDG和DGDG）在光合作用中的重要功能 | 第14-15页 |
| 1.2.2 半乳糖脂（MGDG和DGDG）的结构与生物合成 | 第15-18页 |
| 1.2.3 半乳糖脂（MGDG和DGDG）的转运 | 第18-20页 |
| 1.3 DGDG与豆科植物根瘤的共生固氮 | 第20-21页 |
| 1.4 研究目的和意义 | 第21-23页 |
| 1.5 技术路线 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-28页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第24页 |
| 2.1.2 质粒和菌株 | 第24页 |
| 2.1.3 主要分子生物学试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.4 常用培养基及缓冲液 | 第25-27页 |
| 2.1.5 引物序列及抗生素 | 第27-28页 |
| 2.1.6 主要仪器 | 第28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-37页 |
| 2.2.1 分子生物学基本操作 | 第28页 |
| 2.2.2 基因表达特征分析 | 第28-31页 |
| 2.2.3 MtDGD1启动子分析 | 第31-32页 |
| 2.2.4 苜蓿毛根转化实验 | 第32-34页 |
| 2.2.5 固氮酶活的测定 | 第34-35页 |
| 2.2.6 脂质含量和组成分析 | 第35-36页 |
| 2.2.7 MtDGD1在低磷处理后的转录水平检测 | 第36页 |
| 2.2.8 MtDGD1在低磷处理后DGDG等脂质丰度变化检测 | 第36-37页 |
| 3 结果与分析 | 第37-58页 |
| 3.1 MtDGD1基因的共生表达特征分析 | 第37-41页 |
| 3.1.1 MtDGD1的时空和组织特异性表达 | 第37-39页 |
| 3.1.2 MtDGD1启动子克隆和表达定位 | 第39-41页 |
| 3.2 MtDGD1基因沉默及共生固氮表型 | 第41-47页 |
| 3.2.1 MtDGD1在蒺藜苜蓿发根中的沉默及效率 | 第41-42页 |
| 3.2.2 MtDGD1沉默显著减少根瘤中DGDG丰度 | 第42-43页 |
| 3.2.3 MtDGD1沉默抑制根瘤形成数量和固氮活性 | 第43-45页 |
| 3.2.4 MtDGD1基因沉默影响根瘤发育 | 第45-47页 |
| 3.3 MtDGD1基因超表达及共生固氮表型 | 第47-53页 |
| 3.3.1 MtDGD1在蒺藜苜蓿发根中的超表达及效率 | 第47-48页 |
| 3.3.2 MtDGD1超表达对根瘤中DGDG丰度的影响 | 第48-49页 |
| 3.3.3 MtDGD1超表达后对根瘤数量和固氮活性的影响 | 第49-51页 |
| 3.3.4 MtDGD1超表达对根瘤发育的影响 | 第51-53页 |
| 3.4 低磷条件下苜蓿植株根瘤中MtDGD1转录水平和各脂质变化 | 第53-58页 |
| 3.4.1 MtDGD1在低磷处理下的转录水平 | 第54-55页 |
| 3.4.2 在低磷处理下植株各组织中脂质丰度变化 | 第55-58页 |
| 4 小结与讨论 | 第58-63页 |
| 4.1 小结 | 第58页 |
| 4.2 讨论 | 第58-63页 |
| 第二章 聚半乳糖醛酸酶基因MtPG在蒺藜苜蓿共生固氮中的功能研究 | 第63-91页 |
| 摘要 | 第63-64页 |
| Abstract | 第64-65页 |
| 缩略语表 | 第65-66页 |
| 1 前言 | 第66-71页 |
| 1.1 植物细胞壁组分 | 第66-67页 |
| 1.2 植物细胞中的聚半乳糖醛酸酶（PGs） | 第67-68页 |
| 1.3 PG与生物固氮 | 第68页 |
| 1.4 研究目的和意义 | 第68-70页 |
| 1.5 技术路线 | 第70-71页 |
| 2 材料与方法 | 第71-78页 |
| 2.1 实验材料 | 第71-73页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第71页 |
| 2.1.2 质粒和菌株 | 第71页 |
| 2.1.3 主要分子生物学试剂 | 第71-72页 |
| 2.1.4 引物序列 | 第72-73页 |
| 2.1.5 常用培养基及缓冲液 | 第73页 |
| 2.1.6 主要仪器 | 第73页 |
| 2.2 实验方法 | 第73-78页 |
| 2.2.1 分子生物学基本操作 | 第73页 |
| 2.2.2 基因表达特征分析 | 第73-74页 |
| 2.2.3 MtPG启动子分析 | 第74页 |
| 2.2.4 苜蓿基因组DNA的抽提 | 第74-75页 |
| 2.2.5 突变体筛选 | 第75-77页 |
| 2.2.6 固氮酶活的测定 | 第77-78页 |
| 3 结果与分析 | 第78-89页 |
| 3.1 MtPG基因序列和编码蛋白的结构域分析 | 第78页 |
| 3.2 MtPG的同源性比对和系统发育分析 | 第78-80页 |
| 3.3 MtPG在共生条件下的时空表达和特异性表达 | 第80-81页 |
| 3.4 MtPG启动子的克隆及GUS融合载体构建 | 第81-82页 |
| 3.5 MtPG基因Tnt1插入突变体的确定及筛选 | 第82-85页 |
| 3.6 MtPG纯合突变体NF4746的共生表型检测分析 | 第85-89页 |
| 4 小结与讨论 | 第89-91页 |
| 4.1 小结 | 第89页 |
| 4.2 讨论 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-99页 |
| 附录A | 第99-103页 |
| 附录B | 第103-116页 |
| 论文发表情况 | 第116-117页 |
| 致谢 | 第117页 |
