| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 第一章 引言 | 第9-41页 |
| 1.1. 前言 | 第9页 |
| 1.2. 蛋白激酶及其分析方法 | 第9-17页 |
| 1.2.1. 蛋白激酶调节蛋白磷酸化反应的机理 | 第9-11页 |
| 1.2.2. 蛋白激酶的分析方法及研究现状 | 第11-17页 |
| 1.2.2.1. 比色法对蛋白激酶活性的分析 | 第12-13页 |
| 1.2.2.2. 荧光法对蛋白激酶活性的分析 | 第13-14页 |
| 1.2.2.3. 质谱法对蛋白激酶活性的分析 | 第14-15页 |
| 1.2.2.4. 电化学对蛋白激酶活性的分析 | 第15-17页 |
| 1.3. PEC生物传感器的原理及应用 | 第17-39页 |
| 1.3.1. PEC生物传感器的基本原理 | 第18-19页 |
| 1.3.2. PEC生物传感器的组成 | 第19-20页 |
| 1.3.3. 光电化学材料的分类及应用 | 第20-31页 |
| 1.3.3.1. 基于无机纳米光电活性材料的PEC传感器 | 第21-28页 |
| 1.3.3.2. 基于有机光电活性材料的PEC传感器 | 第28-29页 |
| 1.3.3.3. 基于导电高分子光电活性材料的PEC传感器 | 第29-31页 |
| 1.3.4. PEC生物传感器的应用 | 第31-39页 |
| 1.3.4.1. DNA检测 | 第31-33页 |
| 1.3.4.2. 免疫分析 | 第33-35页 |
| 1.3.4.3. 金属离子分析 | 第35-36页 |
| 1.3.4.4. 细胞及细胞相关分析 | 第36-37页 |
| 1.3.4.5. 蛋白激酶分析 | 第37-38页 |
| 1.3.4.6. 其他酶、微生物等分析 | 第38-39页 |
| 1.4. PEC生物传感器的研究趋势及发展前景 | 第39-41页 |
| 第二章 基于局域表面等离子效应及染料敏化效应的PEC生物传感器检测蛋白激酶活性 | 第41-61页 |
| 2.1. 引言 | 第41-42页 |
| 2.2. 实验部分 | 第42-45页 |
| 2.2.1. 主要试剂与仪器 | 第42-43页 |
| 2.2.2. DNA修饰Au NPs ( DNA@Au NPs ) 探针的准备 | 第43页 |
| 2.2.3. 肯普肽在电极上的磷酸化反应 | 第43-44页 |
| 2.2.4. 细胞的培养与细胞裂解液的提取 | 第44-45页 |
| 2.3. 实验结果与讨论 | 第45-60页 |
| 2.3.1. 实验机理 | 第45-46页 |
| 2.3.2. Au NPs及DNA@Au NPs的表征 | 第46-47页 |
| 2.3.3. 肯普肽修饰电极的表征 | 第47-48页 |
| 2.3.4. PEC生物传感器的光电流响应 | 第48-52页 |
| 2.3.5. 实验条件的优化 | 第52-54页 |
| 2.3.6. PKA的光电化学检测 | 第54-57页 |
| 2.3.7. PKA的抑制性实验及在细胞裂解液中活性的检测 | 第57-60页 |
| 2.4. 结论 | 第60-61页 |
| 第三章 金属有机骨架识别及信号放大应用于PEC生物传感器分析蛋白激酶活性 | 第61-77页 |
| 3.1. 引言 | 第61-62页 |
| 3.2. 实验部分 | 第62-64页 |
| 3.2.1. 实验试剂与材料 | 第62页 |
| 3.2.2. 实验仪器 | 第62页 |
| 3.2.3. UiO - 66的合成与UiO - 66负载染料吡啶钌 ( [Ru(bpy)_3]~(2+)@UiO - 66 ) 探针的制备 | 第62页 |
| 3.2.4. 肯普肽在电极上的磷酸化反应 | 第62-63页 |
| 3.2.5. 细胞的培养与细胞裂解液的提取 | 第63-64页 |
| 3.3. 实验结果与讨论 | 第64-76页 |
| 3.3.1. 传感器的组装及传感机制 | 第64页 |
| 3.3.2. UiO - 66及 [Ru(bpy)_3]~(2+)@UiO - 66的表征 | 第64-66页 |
| 3.3.3. 肯普肽修饰电极的表征 | 第66-68页 |
| 3.3.4. PEC生物传感器的光电流响应 | 第68-70页 |
| 3.3.5. 实验条件的优化 | 第70-72页 |
| 3.3.6. PKA的光电化学检测 | 第72-74页 |
| 3.3.7. PKA的抑制性实验及在细胞裂解液中活性的检测 | 第74-76页 |
| 3.4. 结论 | 第76-77页 |
| 第四章 基于激子 - 等离子激元能量相互作用的PEC生物传感器对蛋白激酶活性的研究 | 第77-89页 |
| 4.1.引言 | 第77页 |
| 4.2. 实验部分 | 第77-78页 |
| 4.2.1. 实验试剂与材料 | 第77页 |
| 4.2.2. 实验仪器 | 第77页 |
| 4.2.3. CdS QDs、Au NPs和探针DNA/Au NPs的合成 | 第77-78页 |
| 4.2.4. 电极的组装及肯普肽在电极上的磷酸化反应 | 第78页 |
| 4.2.5. 细胞的培养与细胞裂解液的提取 | 第78页 |
| 4.3. 实验结果与讨论 | 第78-87页 |
| 4.3.1. PEC传感器的组装及实验原理 | 第78-80页 |
| 4.3.2. CdS QDs、Au NPs和DNA/Au NPs的表征 | 第80-81页 |
| 4.3.3. CdS/TiO_2/ITO电极的光电性能 | 第81-82页 |
| 4.3.4. PEC生物传感器的光电流响应 | 第82-84页 |
| 4.3.5. 光学实验条件的优化 | 第84-86页 |
| 4.3.6. PKA的光电化学检测 | 第86页 |
| 4.3.7. 细胞裂解液中PKA活性的检测 | 第86-87页 |
| 4.4. 结论 | 第87-89页 |
| 第五章 结论 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-107页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第107-109页 |
| 致谢 | 第109-110页 |
