| 中英文缩略词对照表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 第一章 没食子酸对人四型腺病毒感染后细胞形态和存活率的影响 | 第12-21页 |
| 1 实验材料 | 第12-13页 |
| 1.1 病毒株和细胞株 | 第12页 |
| 1.2 实验药物 | 第12页 |
| 1.3 主要试剂 | 第12页 |
| 1.4 主要仪器 | 第12-13页 |
| 1.5 主要溶液的配置 | 第13页 |
| 2 实验方法 | 第13-15页 |
| 2.1 没食子酸(Gallic Acid,GA)对A549细胞的毒性试验 | 第13-14页 |
| 2.2 半数中毒浓度(TC_(50))的测定 | 第14页 |
| 2.3 人四型病毒(HAdV-4)的毒力测定 | 第14页 |
| 2.4 GA对HAdV-4的体外抑制作用(四种加药方式) | 第14-15页 |
| 3 结果与分析 | 第15-20页 |
| 3.1 没食子酸(Gallic Acid,GA)对A549细胞的毒性试验 | 第15-17页 |
| 3.2 半数中毒浓度(TC_(50))的测定 | 第17-18页 |
| 3.3 HAdV-4的毒力(TCID_(50))测定 | 第18页 |
| 3.4 GA对HAdV-4的体外抑制作用(四种加药方式) | 第18-20页 |
| 4 小结 | 第20-21页 |
| 第二章 没食子酸对人四型腺病毒基因拷贝数的影响 | 第21-32页 |
| 1 实验材料 | 第21-22页 |
| 1.1 病毒、菌株和细胞株 | 第21页 |
| 1.2 主要试剂 | 第21-22页 |
| 1.3 主要仪器 | 第22页 |
| 1.4 主要溶液配置 | 第22页 |
| 1.5 引物设计于合成 | 第22页 |
| 2 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.1 阳性标准品的制备 | 第23页 |
| 2.2. 建立SYBR Green I荧光定量PCR标准曲线 | 第23-24页 |
| 2.3 Real time PCR检测没食子酸对人四型腺病毒基因拷贝数的影响 | 第24页 |
| 3 结果与分析 | 第24-30页 |
| 3.1 SYBR Green I PCR反应条件的确定及标准曲线的建立 | 第24-30页 |
| 3.2 Real time PCR检测没食子酸对人四型腺病毒基因拷贝数的影响 | 第30页 |
| 4 小结 | 第30-32页 |
| 第三章 没食子酸对人四型腺病毒衣壳蛋白的合成的影响 | 第32-36页 |
| 1 实验材料 | 第32-33页 |
| 1.1 主要材料和试剂 | 第32页 |
| 1.2 主要仪器 | 第32-33页 |
| 1.3 主要溶液配制 | 第33页 |
| 2 实验方法 | 第33-34页 |
| 2.1 病毒蛋白抽提取 | 第33页 |
| 2.2 蛋白定量 | 第33页 |
| 2.3 SDS-PAGE配置 | 第33页 |
| 2.4 待检测蛋白样品上样量 | 第33-34页 |
| 2.5 电泳条件 | 第34页 |
| 2.6 转膜(湿转法) | 第34页 |
| 2.7 封闭和一抗孵育 | 第34页 |
| 2.8 洗膜及二抗孵育 | 第34页 |
| 2.9 显影 | 第34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-35页 |
| 4 小结 | 第35-36页 |
| 讨论 | 第36-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-43页 |
| 文献综述 | 第43-48页 |
| 参考文献 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 简历 | 第49-50页 |
