| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-41页 |
| 1.1 生物活性物质 | 第13-15页 |
| 1.2 电化学传感器 | 第15-19页 |
| 1.2.1 生物电化学传感器 | 第16-19页 |
| 1.2.1.1 电化学酶传感器 | 第18-19页 |
| 1.3 碳泡沫材料及其在电化学中的应用 | 第19-21页 |
| 1.3.1 碳泡沫材料的简介 | 第19-20页 |
| 1.3.2 碳泡沫材料在电化学中的应用 | 第20-21页 |
| 1.4 生物质多孔碳材料及其在电化学传感器中的应用 | 第21-24页 |
| 1.4.1 生物质多孔碳材料的简介 | 第21-23页 |
| 1.4.2 生物质多孔碳材料在电化学中的应用 | 第23-24页 |
| 1.5 金属有机框架材料及其在电化学传感器中的应用 | 第24-26页 |
| 1.5.1 金属有机框架材料的简介 | 第24-25页 |
| 1.5.2 金属-有机框架材料在电化学传感器中的应用 | 第25-26页 |
| 1.6 电化学传感展望 | 第26页 |
| 1.7 色谱分析法简介 | 第26-30页 |
| 1.7.1 高效液相色谱法 | 第27-28页 |
| 1.7.2 超高效液相色谱 | 第28-30页 |
| 1.8 超高效液相色谱-质谱联用技术 | 第30-39页 |
| 1.8.1 UPLC-Q-TOF-MS与UPLC-TOF-MS~E | 第37-38页 |
| 1.8.2 RRLC-MS/MS | 第38-39页 |
| 1.9 本论文的研究目的和意义 | 第39-41页 |
| 第二章 基于含氮弹性碳泡沫材料的新型葡萄糖生物传感平台的构筑 | 第41-56页 |
| 2.1 引言 | 第41-42页 |
| 2.2 实验部分 | 第42-44页 |
| 2.2.1 试剂 | 第42页 |
| 2.2.2 GOD/NECF一体电极的制备 | 第42-44页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第44页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第44-52页 |
| 2.3.1 NECF材料与GOD/NECFE的表征 | 第44-46页 |
| 2.3.2 GOD/GCE、GOD/CPE和GOD/NECFE对葡萄糖检测的电化学响应 | 第46-47页 |
| 2.3.3 实验条件的优化 | 第47-49页 |
| 2.3.4 GOD/NECFE对葡萄糖的检测性能研究 | 第49-50页 |
| 2.3.5 所制备传感器的选择性、重现性和稳定性 | 第50-52页 |
| 2.3.6 所制备传感器对实际样品中葡萄糖的检测 | 第52页 |
| 2.4 结论 | 第52-56页 |
| 第三章 基于球形MOF-5 /三维多孔碳复合材料的抗坏血酸无酶电化学传感器研究 | 第56-70页 |
| 3.1 引言 | 第56-57页 |
| 3.2 实验部分 | 第57-60页 |
| 3.2.1 试剂 | 第57页 |
| 3.2.2 MOF-5/3D-KSC复合材料的制备 | 第57-58页 |
| 3.2.3 MOF-5/3D-KSC一体电极的制备 | 第58-59页 |
| 3.2.4 实验仪器 | 第59-60页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第60-67页 |
| 3.3.1 MOF-5/3D-KSC的表征 | 第60-61页 |
| 3.3.2 MOF-5/3D-KSC一体电极的电化学行为 | 第61-63页 |
| 3.3.3 实验条件的优化 | 第63-65页 |
| 3.3.4 MOF-5/3D-KSC一体电极对AA的时间-电流曲线 | 第65页 |
| 3.3.5 修饰电极的选择性、重现性和稳定性 | 第65-66页 |
| 3.3.6 实际样品中AA的检测 | 第66-67页 |
| 3.4 结论 | 第67-70页 |
| 第四章 设计和制备基于含氮多孔碳材料的开路电位型生物传感器用于小鼠组织和大鼠活体葡萄糖检测 | 第70-87页 |
| 4.1 引言 | 第70-71页 |
| 4.2 实验部分 | 第71-74页 |
| 4.2.1 试剂、材料和实验动物 | 第71页 |
| 4.2.2 毛细管填充KSC的微电极（KSCME）制备 | 第71-72页 |
| 4.2.3 GOD/KSCME修饰电极的制备 | 第72页 |
| 4.2.4 仪器设备 | 第72-73页 |
| 4.2.5 离体检测试验 | 第73页 |
| 4.2.6 活体检测试验 | 第73-74页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第74-84页 |
| 4.3.1 KSC、KSC糊和GOD/KSCMEs的表征 | 第74-76页 |
| 4.3.2 OCPS检测葡萄糖的机制推导 | 第76-79页 |
| 4.3.3 实验条件的优化 | 第79-80页 |
| 4.3.4 OCPS的分析性能 | 第80-81页 |
| 4.3.5 小鼠组织匀浆液中葡萄糖的离体检测 | 第81-83页 |
| 4.3.6 大鼠皮下组织液葡萄糖水平的活体在线监测 | 第83-84页 |
| 4.4 结论 | 第84-87页 |
| 第五章 UPLC-QTOF-MS~E分析克咳胶囊的活性物质与其在血--脑屏障间的移行 | 第87-107页 |
| 5.1 引言 | 第87-88页 |
| 5.2 实验部分 | 第88-90页 |
| 5.2.1 仪器与实验材料 | 第88页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第88-90页 |
| 5.2.2.1 供试品和对照品溶液的配制 | 第88页 |
| 5.2.2.2 动物实验取材 | 第88-89页 |
| 5.2.2.3 生物样品处理 | 第89页 |
| 5.2.2.4 色谱条件 | 第89页 |
| 5.2.2.5 质谱条件 | 第89页 |
| 5.2.2.6 数据采集与分析 | 第89-90页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第90-107页 |
| 5.3.1 克咳胶囊典型色谱图 | 第90页 |
| 5.3.2 克咳胶囊中主要活性物质的质谱解析 | 第90-97页 |
| 5.3.3 克咳胶囊活性物质的分析结果 | 第97-102页 |
| 5.3.4 克咳胶囊吸收入血与入脑物质的分析结果 | 第102-107页 |
| 第六章 RRLC–MS/MS法对克咳胶囊3种典型生物碱的药代动力学与脑组织分布研究 | 第107-125页 |
| 6.1 引言 | 第107-109页 |
| 6.2 RRLC–MS/MS体内分析方法的建立和确证 | 第109-120页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第109-110页 |
| 6.2.2 实验方法 | 第110-113页 |
| 6.2.2.1 溶液的配制 | 第110页 |
| 6.2.2.1 液相条件 | 第110页 |
| 6.2.2.2 质谱条件 | 第110-111页 |
| 6.2.2.3 生物样品处理 | 第111-112页 |
| 6.2.2.4 色谱、质谱条件的优化，生物样品处理方法的选择与内标的筛选 | 第112-113页 |
| 6.2.2.5 方法确证过程 | 第113页 |
| 6.2.3 生物样品分析方法确证 | 第113-120页 |
| 6.3 克咳胶囊3种典型生物碱的药代动力学与脑组织分布研究 | 第120-124页 |
| 6.3.1 实验材料 | 第120页 |
| 6.3.1.1 药品、动物 | 第120页 |
| 6.3.2 实验方法 | 第120页 |
| 6.3.2.1 灌胃溶液的配制 | 第120页 |
| 6.3.2.2 大鼠给药与生物样品采集 | 第120页 |
| 6.3.3 实际样品测定，数据处理与统计分析 | 第120-121页 |
| 6.3.4 药动学研究结果 | 第121-122页 |
| 6.3.5 脑组织分布研究结果 | 第122-124页 |
| 6.4 结论 | 第124-125页 |
| 结论与展望 | 第125-128页 |
| 参考文献 | 第128-154页 |
| 致谢 | 第154-155页 |
| 在读期间公开发表论文及科研情况 | 第155-156页 |
