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CDK5在TGF-β1诱导的EMT和乳腺癌进程中的作用机制研究

摘要第1-5页
Abstract第5-6页
目录第6-9页
第一部分 研究背景第9-45页
 一、 CDK5基因及其研究进展第9-19页
  (一) CDK家族简介第9-12页
  (二) CDK5/p35及其研究进展第12-19页
 二、 TGF-β与癌症相关机制研究进展第19-22页
  (一) TGF-β简介第19-20页
  (二) TGF-β1调控癌症进程的机制第20-22页
 三、 乳腺癌恶性转移相关机制研究进展第22-29页
  (一) 乳腺癌转移机制的研究进展第22-28页
  (二) 转移相关因子的研究简介第28-29页
 四、 上皮-间质转化过程第29-36页
  (一) EMT的分类与分子标志第30-33页
  (二) EMT与癌症转移第33-34页
  (三) EMT与乳腺癌第34-35页
  (四) TGF-β1与EMT第35-36页
 五、 FAK 基因及其研究进展第36-43页
  (一) FAK的结构第37-38页
  (二) FAK的功能第38-43页
 六、 本论文研究的内容和意义第43-45页
  (一) 立题依据第43页
  (二) 本论文的研究内容和意义第43-45页
第二部分 实验材料与方法第45-66页
 一、 实验材料第45-47页
  (一) 质粒第45-46页
  (二) 蛋白质和抗体第46页
  (三) 哺乳动物细胞系第46页
  (四) 试剂第46-47页
 二、 实验方法第47-66页
  Ⅰ. 分子生物学实验方法第47-52页
   (一) 分子克隆第47页
   (二) DNA的琼脂糖电泳第47页
   (三) 质粒大量制备的方法第47-49页
   (四) 哺乳动物细胞总RNA的提取第49-50页
   (五) 逆转录第50-51页
   (六) PCR和荧光适时定量realtime PCR第51-52页
  Ⅱ. 细胞生物学实验方法第52-59页
   (一) 哺乳动物细胞系的培养第52-53页
   (二) 真核生物细胞的瞬时转染第53-55页
   (三) 慢病毒转染技术第55-57页
   (四) MTT细胞活性检测实验第57-58页
   (五) 肿瘤细胞迁移和侵袭实验第58-59页
   (六) 裸鼠实验第59页
  Ⅲ. 蛋白的生物化学实验方法第59-65页
   (一) 细胞总蛋白的提取第59-60页
   (二) 组织蛋白的提取第60页
   (三) SDS-PAGE电泳和Western Blotting第60-62页
   (四) 蛋白质免疫共沉淀实验(CoIP)第62-64页
   (五) 免疫荧光实验(IF)第64-65页
   (六) 免疫组化实验(IHC)第65页
  Ⅳ. 统计分析第65-66页
第三部分 实验结果与分析第66-85页
 一、 CDK5和p35在乳腺癌细胞系和乳腺癌组织中的表达水平第66-69页
  (一) CDK5和p35在乳腺癌细胞系中高表达第66页
  (二) CDK5和p35在乳腺癌组织中高表达第66-67页
  (三) CDK5的表达水平与乳腺癌预后相关第67-69页
 二、 CDK5和p35在TGF-β1诱导的EMT过程中表达上调,并伴随CDK5的激酶活性增强第69-73页
  (一) TGF-β1诱导乳腺表皮细胞发生EMT第69-71页
  (二) 在TGF-β1诱导发生EMT过程中CDK5和p35表达上调,并伴随CDK5的激酶活性增强第71-73页
 三、 干涉CDK5的表达抑制TGF-β1诱导的EMT发生第73-76页
 四、 干涉CDK5的表达或抑制CDK5的激酶活性影响乳腺癌细胞的功能第76-81页
  (一) 干涉CDK5的表达或抑制CDK5的激酶活性抑制乳腺癌细胞的能动性第76-78页
  (二) 干涉CDK5表达或抑制CDK5激酶活性对乳腺癌EMT的作用第78-80页
  (三) 干涉CDK5的表达抑制裸鼠体内肿瘤的形成第80-81页
 五、 CDK5通过磷酸化FAK第732位丝氨酸影响乳腺癌细胞系的功能第81-83页
 六、 干涉CDK5的表达影响细胞骨架的重塑第83页
 七、 CDK5、p35和FAK共存于一个蛋白复合物中第83-85页
第四部分 讨论第85-90页
 一、 CDK5与EMT第85-86页
 二、 CDK5、TGF-β1与癌症恶化转移第86-87页
 三、 CDK5、FAK与癌症恶化转移第87-90页
主要结论和创新点第90-91页
参考文献第91-105页
附录第105-106页
致谢第106-107页
在学期间公开发表论文及著作情况第107页

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