| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 0 前言 | 第14-38页 |
| ·糖尿病 | 第14-18页 |
| ·糖尿病的主要类型 | 第14页 |
| ·糖尿病的主要发病机理 | 第14-18页 |
| ·糖尿病的治疗现状 | 第18页 |
| ·绿茶对糖尿病的防治作用 | 第18-19页 |
| ·茶多酚概况 | 第19-23页 |
| ·茶多酚的基本组成和性质 | 第19-20页 |
| ·茶多酚的提取方法 | 第20-21页 |
| ·茶多酚的主要应用 | 第21-22页 |
| ·茶多酚治疗糖尿病的研究进展 | 第22-23页 |
| ·茶多糖概况 | 第23-28页 |
| ·茶多糖的组成结构 | 第23-24页 |
| ·茶多糖的提取分离纯化 | 第24-26页 |
| ·茶多糖治疗糖尿病的研究进展 | 第26-28页 |
| ·立题背景和意义 | 第28-29页 |
| ·研究内容 | 第29页 |
| 参考文献 | 第29-38页 |
| 1 茶多糖和茶多酚的综合提取分离 | 第38-49页 |
| ·材料与仪器 | 第38-39页 |
| ·材料和试剂 | 第38页 |
| ·实验仪器 | 第38-39页 |
| ·方法与步骤 | 第39-42页 |
| ·主要测定方法 | 第39-40页 |
| ·预处理 | 第40页 |
| ·茶多糖和茶多酚的综合提取工艺 | 第40-41页 |
| ·热水浸提法单因素实验 | 第41-42页 |
| ·正交实验 | 第42页 |
| ·结果与讨论 | 第42-47页 |
| ·热水浸提茶多酚和茶多糖的单因素分析 | 第42-45页 |
| ·热水浸提茶多酚和茶多糖的正交优化 | 第45-47页 |
| ·验证实验 | 第47页 |
| ·有机溶剂综合法分离茶多糖和茶多酚 | 第47页 |
| ·本章小结 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-49页 |
| 2 茶多糖的分离纯化和性质研究 | 第49-71页 |
| ·材料与仪器 | 第49-50页 |
| ·材料和试剂 | 第49页 |
| ·实验仪器 | 第49-50页 |
| ·实验方法 | 第50-55页 |
| ·茶多糖的分离纯化流程 | 第50-51页 |
| ·水提醇沉法提取多糖的条件优化 | 第51页 |
| ·进一步脱除多酚方法 | 第51-52页 |
| ·PVPP 和CTS 树脂吸附多酚方法的选择 | 第51-52页 |
| ·PVPP 吸附多酚方法的优化 | 第52页 |
| ·CTS 树脂脱色 | 第52页 |
| ·Q-Separose FF 强阴离子交换柱层析法纯化多糖 | 第52-53页 |
| ·茶多糖组分的分析鉴定 | 第53-55页 |
| ·茶多酚的含量测定 | 第53页 |
| ·茶多糖的含量测定 | 第53页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第53-54页 |
| ·糖醛酸含量测定 | 第54页 |
| ·分子量的测定 | 第54页 |
| ·单糖组成分析 | 第54-55页 |
| ·氨基酸组成分析 | 第55页 |
| ·紫外可见吸收光谱分析 | 第55页 |
| ·红外光谱分析 | 第55页 |
| ·结果与讨论 | 第55-68页 |
| ·粗多糖原料的基本组成 | 第55-56页 |
| ·醇沉多糖条件的优化 | 第56-58页 |
| ·脱除多酚方案 | 第58-61页 |
| ·PVPP 和CTS 树脂吸附多酚方法的效果比较 | 第58-59页 |
| ·PVPP 吸附多酚的实验优化 | 第59-61页 |
| ·CTS 树脂脱色效果 | 第61-62页 |
| ·Q-Separose FF 层析法纯化多糖 | 第62-63页 |
| ·多糖组分 TPS、TPS1 和 TPS2 的鉴定及组分分析 | 第63-68页 |
| ·TPS、TPS1 和 TPS2 的基本组成分析 | 第63页 |
| ·TPS、TPS1 和 TPS2 的分子量分布 | 第63-64页 |
| ·单糖组成分析 | 第64-65页 |
| ·氨基酸组成分析 | 第65-66页 |
| ·紫外-可见吸收光谱分析 | 第66页 |
| ·红外光谱分析 | 第66-68页 |
| ·本章小结 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-71页 |
| 3 TPS 和 EGCG 对 STZ 诱导 MIN6 细胞损伤的协同保护作用 | 第71-91页 |
| ·实验材料 | 第71-73页 |
| ·实验细胞株 | 第71页 |
| ·实验药品和溶液的配制 | 第71-72页 |
| ·实验仪器 | 第72-73页 |
| ·实验方法 | 第73-77页 |
| ·细胞培养 | 第73-74页 |
| ·胰岛素分泌实验 | 第74页 |
| ·线粒体膜电位检测 | 第74页 |
| ·单细胞凝胶电泳（SCGE）检测DNA 损伤 | 第74-75页 |
| ·Caspase-3 活性的检测 | 第75-76页 |
| ·细胞内ATP 含量的测定 | 第76页 |
| ·细胞内ROS 水平的测定 | 第76-77页 |
| ·统计学分析 | 第77页 |
| ·结果与讨论 | 第77-88页 |
| ·不同剂量TPS、EGCG 和TPS+EGCG 对MIN6 细胞释放胰岛素功能的影响 | 第77-79页 |
| ·茶水浸提物和TPS+EGCG 组合对MIN6 细胞释放胰岛素功能的影响 | 第79-80页 |
| ·不同剂量TPS、EGCG 和TPS+EGCG 对MIN6 细胞线粒体膜电位的影响 | 第80-81页 |
| ·TPS、EGCG 和TPS+EGCG 组合对MIN6 细胞DNA 损伤的保护情况 | 第81-83页 |
| ·TPS、EGCG 和TPS+EGCG 组合对MIN6 细胞Caspase-3 活性的影响 | 第83-85页 |
| ·TPS、EGCG 和TPS+EGCG 组合对MIN6 细胞ATP 含量的影响 | 第85-86页 |
| ·TPS、EGCG 和TPS+EGCG 组合对MIN6 细胞中ROS 水平的影响 | 第86-87页 |
| ·不同剂量 TPS1 和 TPS2 对 STZ 损伤 MIN6 细胞分泌胰岛素功能的影响 | 第87-88页 |
| ·本章小结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-91页 |
| 论文结论 | 第91-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
| 附:个人简历及攻读硕士学位期间的科研成果 | 第94页 |
| 个人简历 | 第94页 |
| 已发表学术论文 | 第94页 |
