| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-25页 |
| ·引言 | 第8-9页 |
| ·石油中的硫 | 第9-10页 |
| ·石油脱硫技术概述 | 第10-12页 |
| ·碱洗法 | 第10页 |
| ·萃取法 | 第10页 |
| ·络合法 | 第10页 |
| ·吸附法 | 第10-11页 |
| ·催化法 | 第11页 |
| ·加氢脱硫(hydrodesulfurization, HDS) | 第11-12页 |
| ·生物脱硫技术 | 第12页 |
| ·微生物脱硫的研究进展 | 第12-16页 |
| ·微生物脱硫发展历史 | 第12-14页 |
| ·生物脱硫的机理 | 第14-16页 |
| ·固定化微生物技术的研究 | 第16-21页 |
| ·微生物细胞固定化方法 | 第16-18页 |
| ·固定化微生物载体选择 | 第18-20页 |
| ·固定化微生物技术在生物脱硫中的研究进展 | 第20-21页 |
| ·固定化生物反应器 | 第21-23页 |
| ·本课题的研究内容 | 第23-25页 |
| 第二章 主要实验方法 | 第25-35页 |
| ·实验药品与仪器 | 第25-26页 |
| ·培养基 | 第26-27页 |
| ·DBT/乙醇溶液 | 第26页 |
| ·基础培养基(BSM) | 第26-27页 |
| ·选择性培养基(BSM+ DBT) | 第27页 |
| ·固体培养基 | 第27页 |
| ·LB培养基(g/L) | 第27页 |
| ·增值培养基 | 第27页 |
| ·固定化所用细菌 | 第27-28页 |
| ·分析方法 | 第28-31页 |
| ·菌体浓度的检测 | 第28-29页 |
| ·DBT的分光光度计检测法 | 第29-30页 |
| ·DBT的高效液相色谱检测法 | 第30页 |
| ·生长曲线 | 第30-31页 |
| ·菌体的制备 | 第31-32页 |
| ·固定化小球的制作 | 第32页 |
| ·包埋法固定化小球的制作 | 第32页 |
| ·吸附法固定化小球的制作 | 第32页 |
| ·脱硫活性的测定 | 第32-33页 |
| ·游离菌的脱硫实验 | 第32页 |
| ·固定化菌的活化 | 第32页 |
| ·固定化菌的脱硫实验 | 第32-33页 |
| ·水相组成对DBT降解率的影响 | 第33-34页 |
| ·本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 传质助剂的研究 | 第35-45页 |
| ·引言 | 第35页 |
| ·材料与方法 | 第35-36页 |
| ·主要实验试剂和仪器 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-36页 |
| ·DBT含量的测定 | 第36页 |
| ·结果与讨论 | 第36-43页 |
| ·传质助剂对H-412 细胞生长的影响 | 第36页 |
| ·传质助剂对游离H-412 脱硫性能的影响 | 第36-38页 |
| ·传质助剂对固定化脱硫效果的影响 | 第38-39页 |
| ·Tween80 添加量对固定化性能的影响 | 第39-40页 |
| ·Tween80 添加量对固定化脱硫率的影响 | 第40-41页 |
| ·脱硫反应最佳时间的测定 | 第41页 |
| ·pH值敏感性的测定 | 第41-42页 |
| ·循环实验 | 第42-43页 |
| ·本章小结 | 第43-45页 |
| 第四章 吸附法固定化细胞脱硫研究 | 第45-54页 |
| ·引言 | 第45页 |
| ·实验材料与方法 | 第45-47页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第45页 |
| ·菌种 | 第45页 |
| ·载体制备 | 第45-46页 |
| ·固定化方法 | 第46页 |
| ·接触角的测定 | 第46-47页 |
| ·固定化菌的脱硫实验 | 第47页 |
| ·分析方法 | 第47页 |
| ·结果与讨论 | 第47-53页 |
| ·壳聚糖及其衍生物接触角测定 | 第47-48页 |
| ·吸附性能 | 第48-49页 |
| ·吸附时间的影响 | 第49页 |
| ·载体量的确定 | 第49-50页 |
| ·脱硫性能 | 第50-51页 |
| ·可行性研究 | 第51-53页 |
| ·本章小结 | 第53-54页 |
| 第五章 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 致谢 | 第62页 |