| 引言 | 第1-13页 |
| 1 文献综述 | 第13-25页 |
| ·生物中的 NO | 第13-23页 |
| ·NO的理化性质 | 第13页 |
| ·NO的多种活性形式 | 第13页 |
| ·动物中的 NO | 第13-15页 |
| ·来源 | 第13-14页 |
| ·信号转导机制 | 第14-15页 |
| ·生物学功能 | 第15页 |
| ·植物中的 NO | 第15-23页 |
| ·来源 | 第15-19页 |
| ·生理功能 | 第19-21页 |
| ·NO与植物生长发育 | 第19-20页 |
| ·NO与植物抗逆性 | 第20-21页 |
| ·NO与植物激素 | 第21-22页 |
| ·NO信号转导 | 第22-23页 |
| ·侧根发生过程 | 第23-24页 |
| ·侧根发生的启始 | 第23页 |
| ·侧根原基的形成 | 第23页 |
| ·侧根分生组织的形成和活化 | 第23-24页 |
| ·侧根发生的激素调控 | 第24页 |
| ·生长素与侧根发生的启始 | 第24页 |
| ·生长素与侧根原基的形成 | 第24页 |
| ·生长素与侧根原基分生组织的活化 | 第24页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第24-25页 |
| 2. 材料与方法 | 第25-27页 |
| ·材料 | 第25页 |
| ·植物材料 | 第25页 |
| ·主要化学试剂及仪器 | 第25页 |
| ·方法 | 第25-27页 |
| ·绿豆侧根发生的诱导 | 第25-26页 |
| ·试验材料培养 | 第25页 |
| ·生根诱导 | 第25-26页 |
| ·生根统计 | 第26页 |
| ·NADPH-黄递酶活性检测 | 第26页 |
| ·内源 NO荧光检测 | 第26-27页 |
| 3. 结果与分析 | 第27-34页 |
| ·SNP等对绿豆侧根发生的影响 | 第27-29页 |
| ·SNP对绿豆侧根发生的影响 | 第27-28页 |
| ·不同浓度 SNP对绿豆侧根发生的影响 | 第27页 |
| ·SNP处理时间对侧根发生的影响 | 第27-28页 |
| ·SNP-与IBA、NAA混合处理对侧根发生的影响 | 第28页 |
| ·与 IBA混合处理的效应 | 第28页 |
| ·与NAA混合处理的效应 | 第28页 |
| ·L-NAME和c-PTIO对生根的影响 | 第28-29页 |
| ·侧根发生过程中 NADPH-黄递酶的变化 | 第29-33页 |
| ·NADPH-黄递酶的变化 | 第30-31页 |
| ·IBA和 NAA处理对 NADPH-黄递酶变化的影响 | 第31-32页 |
| ·对2-4mm区域 NADPH-黄递酶变化的影响 | 第32页 |
| ·对4-7mm区域 NADPH-黄递酶变化的影响 | 第32页 |
| ·L-NAME处理的效应 | 第32-33页 |
| ·侧根发生过程中内源 NO的产生和分布 | 第33-34页 |
| ·内源 NO的产生和分布 | 第33页 |
| ·IBA对 NO产生和分布的影响 | 第33页 |
| ·NAA对 NO产生和分布的影响 | 第33页 |
| ·L-NAME处理的效应 | 第33-34页 |
| ·C-PTIO处理的效应 | 第34页 |
| 4. 讨论 | 第34-38页 |
| ·外源 NO对侧根发生的影响 | 第34-35页 |
| ·SNP浓度对侧根发生的影响 | 第34页 |
| ·SNP处理时间对侧根发生的影响 | 第34页 |
| ·SNP与 IBA和 NAA混合使用对侧根发生的影响 | 第34-35页 |
| ·内源 NO在侧根发生中的作用 | 第35-36页 |
| ·IBA和 NAA诱导生根过程中NO的作用 | 第36页 |
| ·侧根发生过程中 NO的来源 | 第36-37页 |
| ·IBA和 NAA诱导生根过程中NO的来源 | 第37-38页 |
| 总结 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-47页 |
| 图版说明 | 第47-57页 |
| 图版 | 第57-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第78-79页 |
