| 致谢 | 第1-3页 |
| 目录 | 第3-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| 前言 | 第8-9页 |
| 文献综述 | 第9-22页 |
| 1 生防细菌的种类及其在病害防治中的应用概况 | 第9-10页 |
| ·国外 | 第9页 |
| ·国内 | 第9-10页 |
| 2 生防细菌抗菌机制的研究进展 | 第10-13页 |
| ·竞争和定殖作用 | 第10-11页 |
| ·拮抗作用 | 第11-12页 |
| ·诱导抗性 | 第12-13页 |
| 3 生防菌在植物根部定殖的研究概况 | 第13-16页 |
| ·天然抗生素抗性标记 | 第13-14页 |
| ·基因标记 | 第14-15页 |
| ·DNA和RNA探针法 | 第15页 |
| ·免疫学方法 | 第15-16页 |
| 4 影响引入生防菌根部定殖的因素 | 第16-17页 |
| ·影响根部定殖的生物因素 | 第16-17页 |
| ·细菌的生理学特征 | 第16页 |
| ·细菌细胞表面的性质 | 第16页 |
| ·植物对根部定殖的影响 | 第16-17页 |
| ·土壤环境 | 第17页 |
| ·土壤结构对细菌根际定殖的影响 | 第17页 |
| ·土壤温度及pH值 | 第17页 |
| 5 生防菌的遗传改良及优化组合研究现状 | 第17-18页 |
| 6 细菌鉴定与分类方法 | 第18-22页 |
| ·传统分类和鉴定 | 第19页 |
| ·数值鉴定和自动化鉴定 | 第19-20页 |
| ·数值鉴定 | 第19页 |
| ·自动化鉴定 | 第19-20页 |
| ·核酸分子生物学分类鉴定 | 第20-22页 |
| ·DNA的G+C含量测定 | 第20页 |
| ·DNA同源性测定 | 第20页 |
| ·扩增片段长度多态性分析(AFLP) | 第20页 |
| ·限制性片段长度多态性分析 | 第20-21页 |
| ·随机扩增脱氧核糖核酸多态性分析 | 第21页 |
| ·16S rRNA序列分析 | 第21-22页 |
| 第一章 拮抗菌优化组合研究 | 第22-29页 |
| 1 材料与方法 | 第22-23页 |
| ·供试材料 | 第22页 |
| ·供试菌 | 第22页 |
| ·培养基 | 第22页 |
| ·方法 | 第22-23页 |
| ·拮抗菌的筛选 | 第22页 |
| ·拮抗菌原液及无菌液制备 | 第22页 |
| ·拮抗菌优化组合研究 | 第22-23页 |
| ·各拮抗菌对指示菌的生物活性测定 | 第22-23页 |
| ·拮抗菌不同组合对指示菌的生物活性测定 | 第23页 |
| ·数据处理方法及协同作用判断标准 | 第23页 |
| 2 结果与分析 | 第23-27页 |
| ·拮抗菌筛选结果 | 第23页 |
| ·各拮抗菌生物活性测定结果 | 第23-25页 |
| ·拮抗菌不同组合对指示菌的生物活性测定 | 第25-26页 |
| ·三种菌无菌液的不同比例混配 | 第25-26页 |
| ·四种或五种菌无菌液以不同比例混配 | 第26页 |
| ·各组合协同作用的测定 | 第26-27页 |
| 3 结论与讨论 | 第27-29页 |
| 第二章 拮抗菌B1、B2在豌豆根部的定殖动态研究 | 第29-35页 |
| 1 材料与方法 | 第29-31页 |
| ·供试材料 | 第29页 |
| ·供试菌种 | 第29页 |
| ·培养基与抗生素 | 第29页 |
| ·方法 | 第29-31页 |
| ·拮抗菌B1、B2天然抗药性的检测 | 第29页 |
| ·拮抗菌B1、B2抗Rif突变株的筛选 | 第29页 |
| ·标记菌株B1R、B2R与拮抗菌B1、B2比较 | 第29-30页 |
| ·B1R、B2R菌落形态观察 | 第29页 |
| ·B1R、B2R抗菌活性测定 | 第29页 |
| ·室内盆栽促生和防病效果测定 | 第29-30页 |
| ·标记菌株回收检测 | 第30页 |
| ·标记性状的稳定性检测 | 第30页 |
| ·标记菌株在豌豆根部的定殖和消长动态 | 第30-31页 |
| ·土壤处理 | 第30页 |
| ·种子处理 | 第30页 |
| ·标记菌株在豌豆根部的定殖动态研究 | 第30-31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-33页 |
| ·拮抗菌B1、B2天然抗药性 | 第31页 |
| ·标记菌株与原拮抗菌比较 | 第31-32页 |
| ·菌落形态特征比较 | 第31页 |
| ·标记菌与拮抗菌抗菌活性比较 | 第31-32页 |
| ·室内促生和防病效果 | 第32页 |
| ·标记菌株回收检测 | 第32页 |
| ·标记性状的稳定性检测 | 第32页 |
| ·标记菌株在豌豆根部的定殖动态 | 第32-33页 |
| 3 结论与讨论 | 第33-35页 |
| 第三章 大蒜白腐病病原生物学特性测定及其生防试验 | 第35-41页 |
| 1 材料与方法: | 第35-36页 |
| ·病害症状观察及标样采集 | 第35页 |
| ·病原菌的分离培养 | 第35页 |
| ·病原菌生物学特性测定 | 第35-36页 |
| ·温度对菌丝生长的影响 | 第35页 |
| ·pH值对菌丝生长的影响 | 第35页 |
| ·光照对菌丝生长及菌核形成的影响 | 第35页 |
| ·温度对菌核萌发的影响 | 第35页 |
| ·湿度对菌核萌发的影响 | 第35页 |
| ·病原菌对碳源的利用 | 第35页 |
| ·病原菌对氮源的利用 | 第35-36页 |
| ·拮抗菌B1、B2对大蒜的促生防病试验 | 第36页 |
| ·拮抗菌菌液及无菌液制备 | 第36页 |
| ·菌液浸种对大蒜的促生防病效果 | 第36页 |
| ·灌根及菌土对大蒜的促生防病效果 | 第36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-40页 |
| ·田间症状及培养性状 | 第36-37页 |
| ·生物学特性测定结果 | 第37-39页 |
| ·温度对菌丝生长的影响 | 第37页 |
| ·pH值对菌丝生长的影响 | 第37页 |
| ·不同光处理对菌丝生长及菌核形成的影响 | 第37-38页 |
| ·碳源对菌丝生长及菌核形成的影响 | 第38页 |
| ·氮源对菌丝生长及菌核形成的影响 | 第38页 |
| ·温度对菌核萌发的影响 | 第38页 |
| ·湿度对菌核萌发的影响 | 第38-39页 |
| ·拮抗菌B1、B2对大蒜的促生防病试验 | 第39-40页 |
| 3 结论与讨论 | 第40-41页 |
| 第四章 拮抗菌B1、B2 16S rDNA序列分析 | 第41-51页 |
| 1 材料与方法 | 第41-42页 |
| ·供试菌株及培养基 | 第41页 |
| ·B1、B2基因组DNA的提取与纯化 | 第41-42页 |
| ·试剂 | 第41页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第41-42页 |
| ·PCR扩增 | 第42页 |
| ·引物 | 第42页 |
| ·PCR扩增过程 | 第42页 |
| ·16S rDNA序列分析 | 第42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-50页 |
| ·PCR产物检测 | 第42-43页 |
| ·拮抗菌B1、B2 16S rDNA序列分析 | 第43-49页 |
| ·B1、B2系统发育分析 | 第49-50页 |
| 3 结论与讨论 | 第50-51页 |
| 图版Ⅰ | 第51-52页 |
| 图版Ⅱ | 第52-53页 |
| 图版Ⅲ | 第53-54页 |
| 图版Ⅲ说明 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| ABSTRACT | 第61-62页 |