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Bordetella sp.菌株1-3顺式环氧琥珀酸水解酶的研究

致谢第1-6页
摘要第6-8页
Abstract第8-14页
第一章 文献综述第14-29页
   ·生物催化第14-18页
     ·生物催化技术的核心--生物催化剂第14-16页
     ·生物催化反应的类型第16-17页
     ·生物催化的发展策略与前景第17-18页
   ·环氧化物水解酶第18-22页
     ·环氧化物水解酶的作用机制第19-20页
     ·各种来源的环氧化物水解酶第20-22页
       ·哺乳动物环氧化物水解酶第20-21页
       ·植物的环氧化物水解酶第21页
       ·微生物中的环氧化物水解酶第21-22页
   ·手性化合物研究进展第22-24页
   ·酒石酸的研究概况第24-28页
     ·L(+)-酒石酸的研究概况第24-26页
     ·D(-)-酒石酸的研究概况第26-28页
   ·本研究的目的及内容第28-29页
第二章 产D(-)-酒石酸菌株的分离及鉴定第29-39页
   ·材料第29-30页
     ·菌株的分离源第29页
     ·主要仪器第29页
     ·培养基第29-30页
   ·试验方法第30-32页
     ·富集第30页
     ·菌株的分离纯化第30页
     ·酶活的测定第30-31页
     ·菌株1-3的鉴定第31-32页
       ·细菌的形态观察第31页
       ·生理生化鉴定第31页
       ·DNA G+C含量测定第31-32页
       ·16S rDNA序列测定第32页
       ·基于16S rDNA序列的系统发育分析第32页
   ·结果与分析第32-38页
     ·产D(-)-酒石酸菌株的筛选第32-33页
     ·菌株1-3的鉴定第33-38页
       ·形态学研究第33页
       ·菌株1-3的生理生化特性第33-36页
       ·菌株1-3的DNA G+C含量测定第36页
       ·菌株1-3的16S rDNA序列测定及系统发育分析第36-38页
   ·结论第38-39页
第三章 固定化细胞生产D(-)-酒石酸的研究第39-45页
   ·材料第39-40页
     ·主要仪器第39-40页
     ·试剂及培养基第40页
   ·实验方法第40-41页
     ·细胞固定化及生物转化第40页
     ·转化产物的纯化第40页
     ·纯化产物的鉴定第40-41页
   ·结果与分析第41-44页
     ·细胞固定化及生物转化第41-42页
     ·转化产物的鉴定第42-44页
   ·结论第44-45页
第四章 菌株1-3产酶发酵条件的研究第45-63页
   ·材料第45-46页
     ·主要仪器第45-46页
     ·试剂及培养基第46页
     ·培养条件第46页
   ·单因素实验方法产酶发酵条件的研究第46-48页
     ·不同氮源对菌株1-3产酶的影响第46页
     ·不同碳源对菌株1-3产酶的影响第46-47页
     ·单因素实验方法对所选氮源最佳浓度的确定第47页
     ·不同诱导物对菌株1-3产酶的影响第47页
     ·单因素实验方法对碳源及诱导物最佳浓度的确定第47页
     ·单因素的实验方法确定培养基的最佳起始pH第47页
     ·10升发酵罐发酵菌株1-3的研究第47-48页
   ·响应面的方法确定菌株1-3的产酶发酵条件第48-49页
     ·Plackett-Burman设计优化菌株1-3培养基及培养条件第48页
     ·最陡坡的实验设计第48页
     ·中心组合旋转设计第48-49页
     ·验证实验第49页
   ·结果与讨论第49-62页
     ·不同氮源对菌株1-3产酶的影响第49-50页
     ·不同碳源对菌株1-3产酶的影响第50-52页
     ·碳源浓度对菌株1-3产酶的影响第52页
     ·不同诱导物对菌株1-3产酶的影响第52-53页
     ·不同的起始pH对菌株1-3产酶的影响第53-54页
     ·10升发酵罐对菌株1-3发酵产酶的研究结果第54-55页
     ·Plackett-Burman设计的实验结果第55-57页
     ·最陡坡试验设计的结果第57页
     ·中心组合旋转设计和响应面分析第57-61页
     ·最佳培养条件的验证实验第61-62页
   ·结论第62-63页
第五章 酶的纯化及其性质研究第63-77页
   ·材料第63页
     ·材料及试剂第63页
     ·主要仪器第63页
   ·方法第63-67页
     ·主要方法第63-64页
     ·纯化步骤第64-65页
       ·粗酶液的制备第64页
       ·硫酸铵分级沉淀第64页
       ·离子交换层析第64-65页
       ·疏水层析第65页
       ·分子筛层析第65页
     ·酶性质的研究第65-67页
       ·酶的纯度及分子量的测定第65-66页
       ·酶的最适反应温度及其热稳定性第66页
       ·酶的最适反应pH及其pH稳定性第66页
       ·各种金属离子及化学试剂对酶活的影响第66页
       ·酶促反应动力学研究第66页
       ·酶的N端氨基酸序列和酶活性中心的离子第66-67页
   ·结果及分析第67-76页
     ·顺式环氧琥珀酸水解酶的纯化结果第67-71页
       ·硫酸铵分级沉淀第67页
       ·DEAE-Cellulose离子交换层析第67页
       ·Toyopearl HW-65C疏水层析第67-68页
       ·Sephadex G-75分子筛层析第68-69页
       ·顺式环氧琥珀酸水解酶的提纯结果第69-71页
     ·顺式环氧琥珀酸水解酶的性质第71-76页
       ·顺式环氧琥珀酸水解酶的分子量第71页
       ·酶的最适作用温度与热稳定性第71-72页
       ·酶的最适反应pH与pH稳定性第72-73页
       ·各种金属离子及化学试剂对酶活的影响第73-75页
       ·酶促反应动力学研究第75页
       ·N端氨基酸序列的测定第75-76页
   ·结论第76-77页
第六章 顺式环氧琥珀酸水解酶基因的克隆与表达第77-92页
   ·材料第77-79页
     ·菌种和载体第77页
     ·工具酶及试剂盒第77-78页
     ·其它试剂第78页
     ·常用培养基和缓冲液第78-79页
     ·常用仪器第79页
   ·一般方法第79-82页
     ·基因组DNA的提取第79页
     ·聚合酶链式反应(PCR)第79-80页
     ·小批量快速抽提质粒DNA第80页
     ·感受态细胞的制备第80-81页
     ·目的基因片断的胶回收第81页
     ·连接反应第81页
     ·质粒DNA的转化第81-82页
     ·聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)第82页
   ·具体方法第82-85页
     ·DNA的提取第82-83页
     ·PCR扩增第83页
     ·限制性内切酶双酶切及纯化第83-84页
     ·连接及转化第84页
     ·转化子的挑选及鉴定第84-85页
     ·BL21的转化及诱导表达第85页
   ·结果与讨论第85-91页
     ·菌株1-3基因组的提取及PCR扩增第85-89页
     ·重组质粒的构建第89页
     ·DH5α的转化与重组载体的鉴定第89-90页
     ·E.coli.BL21感受态细胞的转化及诱导表达第90-91页
   ·结论第91-92页
第七章 重组顺式环氧琥珀酸水解酶的纯化及性质的研究第92-99页
   ·材料第92-93页
     ·材料及试剂第92页
     ·培养基及缓冲液第92-93页
     ·主要仪器第93页
   ·方法第93-94页
     ·菌体的大量培养第93页
     ·重组酶的纯化第93-94页
     ·重组蛋白的酶性质研究第94页
       ·重组蛋白分子量的确定第94页
       ·最适pH及pH稳定性第94页
       ·最适反应温度及热稳定性第94页
   ·结果与分析第94-98页
     ·重组酶的纯化第94-95页
     ·重组酶的最适反应pH及pH稳定性第95-97页
     ·重组酶的最适反应温度及热稳定性第97-98页
   ·结论第98-99页
第八章 结论与展望第99-102页
   ·主要结论第99-100页
   ·论文创新点第100页
   ·展望第100-102页
参考文献第102-111页
作者简介第111-112页

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