| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略语中英文对照 | 第11-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一章 猪传染性胃肠炎病毒感染细胞的研究进展 | 第14-20页 |
| 1 病原学 | 第14-15页 |
| 2 生物学特征 | 第15-16页 |
| 3 分子学特性 | 第16页 |
| 4 致病机理 | 第16-18页 |
| 参考文献 | 第18-20页 |
| 第二章 肠道葡萄糖和精氨酸吸收的研究进展 | 第20-38页 |
| 1 肠道葡萄糖转运载体简介 | 第20-21页 |
| 1.1 钠葡萄糖共转运载体1 | 第20-21页 |
| 1.2 葡萄糖转运蛋白2 | 第21页 |
| 2 调控葡萄糖转运载体的因素 | 第21-23页 |
| 2.1 葡萄糖浓度 | 第21页 |
| 2.2 蛋白激酶A和蛋白激酶C | 第21-23页 |
| 2.3 MAPK信号通路蛋白对葡萄转运的调控作用 | 第23页 |
| 3 肠道氨基酸转运载体简介 | 第23-26页 |
| 3.1 阳性氨基酸转运载体1 | 第25页 |
| 3.2 阳性氨基酸转运载体2 | 第25-26页 |
| 3.3 阳性氨基酸转运载体3 | 第26页 |
| 3.4 阳性氨基酸转运载体4 | 第26页 |
| 4 调控肠道氨基酸转运载体的因素 | 第26-29页 |
| 4.1 氨基酸底物浓度 | 第27页 |
| 4.2 蛋白激酶C | 第27-28页 |
| 4.3 毒素和细胞因子 | 第28-29页 |
| 参考文献 | 第29-38页 |
| 第三章 猪传染性胃肠炎病毒感染对肠上皮细胞葡萄糖吸收影响的研究 | 第38-50页 |
| 1 材料与方法 | 第39-42页 |
| 1.1 病毒与细胞株 | 第39页 |
| 1.2 葡萄糖测定试剂盒检测IPEC-J2细胞培养基中葡萄糖含量的变化 | 第39页 |
| 1.3 荧光定量PCR法检测SGLT1、GLUT2 mRNA的水平 | 第39-41页 |
| 1.4 Western-Blot蛋白印迹检测SGLT1、GLUT2蛋白的表达水平 | 第41页 |
| 1.5 CCK8检测IPEC-J2细胞活力 | 第41页 |
| 1.6 CFSE试验检测IPEC-J2细胞增殖能力 | 第41-42页 |
| 2 试验结果 | 第42-44页 |
| 2.1 TGEV感染升高了IPEC-J2细胞的葡萄糖吸收 | 第42页 |
| 2.2 TGEV感染对葡萄糖转运载体SGLT1和GLUT2 mRNA和蛋白水平的影响 | 第42-43页 |
| 2.3 TGEV感染对IPEC-J2细胞增殖和活力的影响 | 第43-44页 |
| 3 讨论 | 第44-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 第四章 EGFR调控IPEC-J2细胞葡萄糖吸收的初步探究 | 第50-70页 |
| 1 材料与方法 | 第50-52页 |
| 1.1 病毒与细胞株 | 第50页 |
| 1.2 葡萄糖测定试剂盒检测IPEC-J2细胞培养基中葡萄糖含量的变化 | 第50-51页 |
| 1.3 Western-Blot蛋白印迹检测SGLT1、GLUT2蛋白的表达水平 | 第51页 |
| 1.4 CCK8检测IPEC-J2细胞活力 | 第51页 |
| 1.5 CFSE试验检测IPEC-J2细胞增殖能力 | 第51页 |
| 1.6 荧光定量PCR法检测TGEVN蛋白mRNA的水平 | 第51页 |
| 1.7 EGFR干扰载体的构建和慢病毒包装 | 第51-52页 |
| 2 试验结果 | 第52-59页 |
| 2.1 TGEV感染对于EGFR和p-EGFR蛋白的影响 | 第52-53页 |
| 2.2 未感染TGEV的IPEC-J2细胞中,EGFR对于葡萄糖吸收的影响 | 第53-55页 |
| 2.3 未感染TGEV的IPEC-J2细胞中,EGFR与SGLT1蛋白表达之间相互关系探究 | 第55-56页 |
| 2.4 在TGEV感染的IPEC-J2细胞中,EGFR对于葡萄糖吸收的影响 | 第56-58页 |
| 2.5 高浓度葡萄糖可以促进TGEV的复制和释放 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-70页 |
| 第五章 猪传染性胃肠炎病毒感染对肠上皮细胞精氨酸吸收影响的研究 | 第70-94页 |
| 1 材料与方法 | 第71-72页 |
| 1.1 病毒与细胞株 | 第71页 |
| 1.2 高效液相色谱检测肠上皮细胞IPEC-J2的精氨酸吸收水平 | 第71-72页 |
| 1.3 Western-Blot蛋白印迹检测CAT1、CAT2蛋白的表达水平 | 第72页 |
| 1.4 CCK8检测IPEC-J2细胞活力 | 第72页 |
| 1.5 CFSE试验检测IPEC-J2细胞增殖能力 | 第72页 |
| 1.6 荧光定量PCR法检测CAT1、CAT2蛋白mRNA的水平 | 第72页 |
| 1.6.1 荧光定量PCR引物设计 | 第72页 |
| 1.7 EGFR、CAT-1干扰载体的构建和慢病毒包装 | 第72页 |
| 2 试验结果 | 第72-83页 |
| 2.1 TGEV感染降低了IPEC-J2细胞的精氨酸吸收 | 第72-73页 |
| 2.2 TGEV感染对氨基酸转运载体CAT-1和CAT-2表达的影响 | 第73-75页 |
| 2.3 TGEV感染对细胞活力的影响 | 第75页 |
| 2.4 PKC参与调控精氨酸的吸收 | 第75-77页 |
| 2.5 p-EGFR参与调控精氨酸的吸收且与CAT-1的蛋白表达不存在相关性 | 第77-79页 |
| 2.6 Caveolin-1参与调控精氨酸的吸收且与CAT-1的蛋白表达存在正相关性 | 第79-81页 |
| 2.7 精氨酸浓度可以影响TGEV复制 | 第81-83页 |
| 3 讨论 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-94页 |
| 全文总结 | 第94-96页 |
| 致谢 | 第96-98页 |
| 发表文章情况 | 第98页 |
