| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第10-30页 |
| 1.1 碳捕集现状概述 | 第10-13页 |
| 1.1.1 碳捕集 | 第11-13页 |
| 1.1.2 碳封存 | 第13页 |
| 1.2 碳酸酐酶简介 | 第13-14页 |
| 1.3 碳酸酐酶固定化 | 第14-20页 |
| 1.3.1 固定化的载体材料 | 第15-17页 |
| 1.3.2 固定化方法 | 第17-18页 |
| 1.3.3 影响固定化效果的因素 | 第18-19页 |
| 1.3.4 碳酸酐酶固定化作用效果 | 第19-20页 |
| 1.4 碳酸酐酶固定化技术的新探索 | 第20-22页 |
| 1.4.1 酶的改进 | 第20-21页 |
| 1.4.2 磁性微球载体的应用 | 第21-22页 |
| 1.5 磁性微球 | 第22-25页 |
| 1.5.1 磁性微球简介 | 第22-23页 |
| 1.5.2 磁性微球在固定化酶上的应用 | 第23-24页 |
| 1.5.3 环氧基功能化磁性微球的应用 | 第24-25页 |
| 1.6 反应器 | 第25-28页 |
| 1.7 课题的研究目的、意义和主要内容 | 第28-30页 |
| 1.7.1 课题的研究目的和意义 | 第28页 |
| 1.7.2 课题研究的主要内容 | 第28-30页 |
| 第2章 实验装置和方法 | 第30-42页 |
| 2.1 实验试剂与仪器 | 第30-31页 |
| 2.2 聚（GMA-DVB）磁性微球的制备 | 第31-33页 |
| 2.2.1 溶剂热法合成纳米Fe_3O_4 | 第32页 |
| 2.2.2 双键改性纳米Fe_3O_4 | 第32页 |
| 2.2.3 合成聚（GMA-DVB）磁性微球 | 第32-33页 |
| 2.2.4 载体材料的筛选 | 第33页 |
| 2.3 固定化酶的制备 | 第33-34页 |
| 2.4 样品的表征 | 第34-35页 |
| 2.5 碳酸酐酶酯酶活力测定 | 第35-37页 |
| 2.5.1 p-NP标准曲线的绘制 | 第35-36页 |
| 2.5.2 固定化酶活力的测定 | 第36-37页 |
| 2.5.3 游离酶活力的测定 | 第37页 |
| 2.6 碳酸酐酶的p-NPA酯酶酶学性质研究 | 第37-39页 |
| 2.6.1 固定化酶和游离酶的最适温度 | 第37页 |
| 2.6.2 固定化酶和游离酶的最适pH | 第37-38页 |
| 2.6.3 固定化酶和游离酶的热稳定性 | 第38页 |
| 2.6.4 固定化酶和游离酶的贮存稳定性 | 第38页 |
| 2.6.5 固定化酶的重复利用性 | 第38页 |
| 2.6.6 以p-NPA为底物的酶催化反应动力学 | 第38-39页 |
| 2.7 酶催化CO_2水合吸收实验 | 第39-42页 |
| 2.7.1 温度对酶催化CO_2水合吸收过程的影响 | 第40-41页 |
| 2.7.2 抑制剂对CA酶催化CO_2水合吸收的影响 | 第41页 |
| 2.7.3 固定化酶催化CO_2水合吸收的重复利用性 | 第41-42页 |
| 第3章 载体材料及固定化酶的制备与表征 | 第42-54页 |
| 3.1 载体材料的筛选 | 第43-44页 |
| 3.2 固定化条件的优化 | 第44-45页 |
| 3.3 载体材料及固定化酶的表征 | 第45-52页 |
| 3.3.1 BET分析 | 第45-46页 |
| 3.3.2 TEM分析 | 第46-47页 |
| 3.3.3 FTIR分析 | 第47-49页 |
| 3.3.4 XRD分析 | 第49-50页 |
| 3.3.5 TG分析 | 第50-51页 |
| 3.3.6 VSM分析 | 第51-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-54页 |
| 第4章 碳酸酐酶的酯酶酶学性质研究 | 第54-62页 |
| 4.1 碳酸酐酶的p-NPA酯酶性能研究 | 第54-61页 |
| 4.1.1 温度对酶活性的影响 | 第54-55页 |
| 4.1.2 pH值对酶活性的影响 | 第55-56页 |
| 4.1.3 固定化酶和游离酶的耐热稳定性 | 第56-57页 |
| 4.1.4 固定化酶和游离酶的贮藏稳定性 | 第57-58页 |
| 4.1.5 固定化酶的重复利用性 | 第58-59页 |
| 4.1.6 以p-NPA为底物的酶催化反应动力学 | 第59-61页 |
| 4.2 本章小结 | 第61-62页 |
| 第5章 酶催化CO_2的水合吸收作用研究 | 第62-72页 |
| 5.1 酶催化CO_2水合作用 | 第62-68页 |
| 5.1.1 温度对酶催化CO_2水合吸收的影响 | 第62-64页 |
| 5.1.2 温度对最大吸收容量的影响 | 第64页 |
| 5.1.3 温度对最大吸收速率的影响 | 第64-67页 |
| 5.1.4 抑制剂对酶催化CO_2水合吸收的影响 | 第67-68页 |
| 5.1.5 固定化酶的重复利用性 | 第68页 |
| 5.2 酶催化CO_2传质-反应机理 | 第68-71页 |
| 5.3 本章小结 | 第71-72页 |
| 第6章 结论与展望 | 第72-74页 |
| 6.1 结论 | 第72-73页 |
| 6.2 展望 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第83页 |
