摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩写注释表 | 第9-14页 |
1 绪论 | 第14-39页 |
1.1 细菌胞外多糖 | 第15-21页 |
1.1.1 细菌胞外多糖的分类和组成 | 第15页 |
1.1.2 细菌葡聚糖 | 第15-21页 |
1.2 细菌胞外多糖的修饰基团 | 第21-23页 |
1.2.1 修饰基团对细菌胞外多糖性质的影响 | 第21-22页 |
1.2.2 修饰基团对细菌胞外多糖生物活性的影响 | 第22-23页 |
1.3 细菌胞外多糖的生物合成与基因学研究 | 第23-36页 |
1.3.1 细菌胞外多糖的生物合成 | 第23-28页 |
1.3.2 细菌胞外多糖生物合成基因簇的研究 | 第28-31页 |
1.3.3 细菌葡聚糖的生物合成 | 第31-34页 |
1.3.4 细菌胞外多糖合成相关基因的克隆 | 第34-36页 |
1.4 寡糖 | 第36-37页 |
1.5 本课题的意义、研究内容和实施方案 | 第37-39页 |
2 索拉胶合成基因簇的克隆与分析 | 第39-72页 |
2.1 材料与方法 | 第39-60页 |
2.1.1 实验材料 | 第39-42页 |
2.1.2 实验仪器 | 第42-43页 |
2.1.3 实验方法 | 第43-60页 |
2.2 结果与讨论 | 第60-70页 |
2.2.1 索拉胶生物合成基因簇的克隆 | 第60-61页 |
2.2.2 索拉胶生物合成基因簇的功能注释与分析 | 第61-66页 |
2.2.3 基因敲除菌株表型的变化 | 第66-68页 |
2.2.4 索拉胶生物合成基因簇的转录分析 | 第68-70页 |
2.3 本章小结 | 第70-72页 |
3 索拉胶修饰基团及相关基因的鉴定 | 第72-95页 |
3.1 材料与方法 | 第72-82页 |
3.1.1 实验材料 | 第72-75页 |
3.1.2 实验仪器 | 第75页 |
3.1.3 实验方法 | 第75-82页 |
3.2 结果与讨论 | 第82-94页 |
3.2.1 索拉胶的酶解 | 第82页 |
3.2.2 索拉胶酶解产物的核磁共振分析 | 第82-83页 |
3.2.3 索拉胶修饰基团的高效液相色谱和质谱分析 | 第83-84页 |
3.2.4 缩酮丙酮酸转移酶SleV和琥珀酰转移酶SleA的序列分析 | 第84-88页 |
3.2.5 基因sleV和sleA的功能鉴定 | 第88-91页 |
3.2.6 琥珀酰修饰基团对索拉胶流变性质的影响 | 第91-94页 |
3.3 本章小结 | 第94-95页 |
4 基因sleH参与索拉胶多糖重复单元的聚合 | 第95-118页 |
4.1 材料与方法 | 第95-101页 |
4.1.1 实验材料 | 第95-97页 |
4.1.2 实验仪器 | 第97-98页 |
4.1.3 实验方法 | 第98-101页 |
4.2 结果与讨论 | 第101-117页 |
4.2.1 索拉胶共聚合酶SleH的序列分析 | 第101-105页 |
4.2.2 突变株MUH胞外糖类物质的分离纯化与分析 | 第105-106页 |
4.2.3 突变株MUH胞外寡糖的单糖组分分析 | 第106页 |
4.2.4 突变株MUH胞外寡糖的薄层层析分离与质谱分析 | 第106-109页 |
4.2.5 突变株MUH胞外寡糖的核磁共振分析 | 第109-117页 |
4.3 本章小结 | 第117-118页 |
5 基因sleH的突变株产索拉胶寡糖的发酵条件优化 | 第118-132页 |
5.1 材料与方法 | 第118-122页 |
5.1.1 实验材料 | 第118-119页 |
5.1.2 实验仪器 | 第119页 |
5.1.3 实验方法 | 第119-122页 |
5.2 结果与讨论 | 第122-131页 |
5.2.1 突变株MUH合成索拉胶寡糖产量的测定 | 第122页 |
5.2.2 突变株MUH产索拉胶寡糖的培养优化 | 第122-129页 |
5.2.3 突变株MUH细胞生长与寡糖产量的关系 | 第129-131页 |
5.3 本章小结 | 第131-132页 |
6 结论 | 第132-135页 |
6.1 研究小结 | 第132-133页 |
6.2 本文创新点 | 第133-134页 |
6.3 对后续研究工作的建议 | 第134-135页 |
致谢 | 第135-137页 |
参考文献 | 第137-160页 |
附录 | 第160页 |