| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-37页 |
| 1.1 腈类化合物及腈转化酶的概述 | 第13-22页 |
| 1.1.1 腈水解酶 | 第13-15页 |
| 1.1.2 腈水合酶 | 第15-20页 |
| 1.1.3 酰胺酶 | 第20-22页 |
| 1.2 β-氨基丙酸 | 第22-27页 |
| 1.2.1 β-氨基丙酸的生产方法 | 第22-25页 |
| 1.2.2 β-氨基丙酸的应用 | 第25-27页 |
| 1.3 生物转化过程中的生物反应器 | 第27-30页 |
| 1.3.1 填充床反应器 | 第27-28页 |
| 1.3.2 密集多相流反应器 | 第28页 |
| 1.3.3 双水相反应体系 | 第28页 |
| 1.3.4 膜生物反应器 | 第28-29页 |
| 1.3.5 微生物转化过程中反应器的研究趋势 | 第29-30页 |
| 1.4 本课题的研究背景、意义及主要内容 | 第30-31页 |
| 1.4.1 研究背景和意义 | 第30页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-37页 |
| 第二章 转化β-氨基丙腈生产β-氨基丙酸的微生物菌种筛选与鉴定 | 第37-48页 |
| 2.1 前言 | 第37页 |
| 2.2 材料与方法 | 第37-40页 |
| 2.2.1 材料 | 第38页 |
| 2.2.2 方法 | 第38-40页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第40-46页 |
| 2.3.1 菌株的分离和筛选 | 第40-41页 |
| 2.3.2 菌落及菌体形态特征 | 第41页 |
| 2.3.3 生理生化特征 | 第41-42页 |
| 2.3.4 Biolog GP2分析 | 第42-43页 |
| 2.3.5 16S rDNA序列测定及系统发育分析 | 第43-44页 |
| 2.3.6 转化能力的初步研究 | 第44-46页 |
| 2.4 小结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-48页 |
| 第三章 Rhodococcus erythropolis G20静息细胞在鼓泡式反应器中转化β-氨基丙腈生产β-氨基丙酸的研究 | 第48-64页 |
| 3.1 前言 | 第48页 |
| 3.2 材料与方法 | 第48-51页 |
| 3.2.1 菌种及培养基 | 第48页 |
| 3.2.2 细胞培养 | 第48-49页 |
| 3.2.3 色谱条件 | 第49页 |
| 3.2.4 反应器设计 | 第49页 |
| 3.2.5 菌体量对转化的影响 | 第49页 |
| 3.2.6 底物浓度对转化的影响 | 第49页 |
| 3.2.7 通气量对转化的影响 | 第49-50页 |
| 3.2.8 响应面法设计实验方案 | 第50页 |
| 3.2.9 温度及缓冲液初始pH对转化过程的影响 | 第50-51页 |
| 3.2.10 转化进程的研究 | 第51页 |
| 3.2.11 批次实验 | 第51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-61页 |
| 3.3.1 单因素实验 | 第51-52页 |
| 3.3.2 响应面优化实验 | 第52-56页 |
| 3.3.2.1 回归模型的建立与检验 | 第52-54页 |
| 3.3.2.2 响应面与等高线图 | 第54-56页 |
| 3.3.2.3 最佳组合的求解及验证 | 第56页 |
| 3.3.3 温度与缓冲液初始pH对转化的影响 | 第56-59页 |
| 3.3.4 最佳条件下的时间进程曲线 | 第59-60页 |
| 3.3.5 转化体系的稳定性研究 | 第60-61页 |
| 3.4 小结 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-64页 |
| 第四章 Rhodococcus erythropolis G20固定化细胞的制备及其在反应器中的转化条件研究 | 第64-87页 |
| 4.1 前言 | 第64页 |
| 4.2 材料与方法 | 第64-69页 |
| 4.2.1 固定化材料 | 第64页 |
| 4.2.2 静息细胞的制备 | 第64-65页 |
| 4.2.3 固定化细胞的制作 | 第65页 |
| 4.2.4 固定化细胞的强化 | 第65页 |
| 4.2.5 最佳固定条件的确定 | 第65页 |
| 4.2.6 最佳强化条件的确定 | 第65-66页 |
| 4.2.6.1 聚乙烯亚胺浓度及强化时间对固定化颗粒影响 | 第65-66页 |
| 4.2.6.2 聚乙烯亚胺的pH值对强化作用的影响 | 第66页 |
| 4.2.6.3 戊二醛浓度及交联时间对转化率的影响 | 第66页 |
| 4.2.6.4 聚乙烯亚胺、pH、Ca~(2+)对强化作用的复合影响 | 第66页 |
| 4.2.7 固定化细胞特性研究 | 第66-67页 |
| 4.2.7.1 固定化细胞的形态观察 | 第66页 |
| 4.2.7.2 转化体系的研究 | 第66-67页 |
| 4.2.7.3 最适温度及热稳定性研究 | 第67页 |
| 4.2.7.4 最佳底物浓度的确定 | 第67页 |
| 4.2.7.5 批次实验 | 第67页 |
| 4.2.8 固定化细胞在反应器中转化的初步研究 | 第67-69页 |
| 4.2.8.1 密集多相流反应器的初步研究 | 第67-68页 |
| 4.2.8.2 填充床反应器的初步研究 | 第68-69页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第69-84页 |
| 4.3.1 正交设计法优化固定化条件 | 第69-71页 |
| 4.3.2 最佳强化条件的研究 | 第71-77页 |
| 4.3.2.1 聚乙烯亚胺浓度及强化时间对固定化颗粒的影响 | 第71-72页 |
| 4.3.2.2 聚乙烯亚胺的pH值对强化作用的影响 | 第72-73页 |
| 4.3.2.3 戊二醛浓度及交联时间对转化率的影响 | 第73页 |
| 4.3.2.4 聚乙烯亚胺、pH、Ca~(2+)对强化作用的复合影响 | 第73-77页 |
| 4.3.3 固定化细胞特性研究 | 第77-81页 |
| 4.3.3.1 固定化细胞的形态观察 | 第77页 |
| 4.3.3.2 最佳转化体系的研究 | 第77-78页 |
| 4.3.3.3 最适温度及热稳定性研究 | 第78-80页 |
| 4.3.3.4 最佳底物浓度的研究 | 第80页 |
| 4.3.3.5 批次实验 | 第80-81页 |
| 4.3.4 固定化细胞在反应器中转化的初步研究 | 第81-84页 |
| 4.3.4.1 密集多相流反应器中转化进程的初步研究 | 第81-82页 |
| 4.3.4.2 填充床反应器的初步研究 | 第82-84页 |
| 4.3.4.2.1 最佳温育时间及温度的确定 | 第82页 |
| 4.3.4.2.2 最佳流速的确定 | 第82-83页 |
| 4.3.4.2.3 转化体系稳定性检测 | 第83-84页 |
| 4.4 小结 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-87页 |
| 第五章 总结与建议 | 第87-89页 |
| 5.1 总结 | 第87-88页 |
| 5.2 建议 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第90页 |
