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生物转化β-氨基丙腈生产β-氨基丙酸的菌株鉴定及其在生物反应器中的转化研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
第一章 绪论第13-37页
    1.1 腈类化合物及腈转化酶的概述第13-22页
        1.1.1 腈水解酶第13-15页
        1.1.2 腈水合酶第15-20页
        1.1.3 酰胺酶第20-22页
    1.2 β-氨基丙酸第22-27页
        1.2.1 β-氨基丙酸的生产方法第22-25页
        1.2.2 β-氨基丙酸的应用第25-27页
    1.3 生物转化过程中的生物反应器第27-30页
        1.3.1 填充床反应器第27-28页
        1.3.2 密集多相流反应器第28页
        1.3.3 双水相反应体系第28页
        1.3.4 膜生物反应器第28-29页
        1.3.5 微生物转化过程中反应器的研究趋势第29-30页
    1.4 本课题的研究背景、意义及主要内容第30-31页
        1.4.1 研究背景和意义第30页
        1.4.2 主要研究内容第30-31页
    参考文献第31-37页
第二章 转化β-氨基丙腈生产β-氨基丙酸的微生物菌种筛选与鉴定第37-48页
    2.1 前言第37页
    2.2 材料与方法第37-40页
        2.2.1 材料第38页
        2.2.2 方法第38-40页
    2.3 结果与讨论第40-46页
        2.3.1 菌株的分离和筛选第40-41页
        2.3.2 菌落及菌体形态特征第41页
        2.3.3 生理生化特征第41-42页
        2.3.4 Biolog GP2分析第42-43页
        2.3.5 16S rDNA序列测定及系统发育分析第43-44页
        2.3.6 转化能力的初步研究第44-46页
    2.4 小结第46-47页
    参考文献第47-48页
第三章 Rhodococcus erythropolis G20静息细胞在鼓泡式反应器中转化β-氨基丙腈生产β-氨基丙酸的研究第48-64页
    3.1 前言第48页
    3.2 材料与方法第48-51页
        3.2.1 菌种及培养基第48页
        3.2.2 细胞培养第48-49页
        3.2.3 色谱条件第49页
        3.2.4 反应器设计第49页
        3.2.5 菌体量对转化的影响第49页
        3.2.6 底物浓度对转化的影响第49页
        3.2.7 通气量对转化的影响第49-50页
        3.2.8 响应面法设计实验方案第50页
        3.2.9 温度及缓冲液初始pH对转化过程的影响第50-51页
        3.2.10 转化进程的研究第51页
        3.2.11 批次实验第51页
    3.3 结果与讨论第51-61页
        3.3.1 单因素实验第51-52页
        3.3.2 响应面优化实验第52-56页
            3.3.2.1 回归模型的建立与检验第52-54页
            3.3.2.2 响应面与等高线图第54-56页
            3.3.2.3 最佳组合的求解及验证第56页
        3.3.3 温度与缓冲液初始pH对转化的影响第56-59页
        3.3.4 最佳条件下的时间进程曲线第59-60页
        3.3.5 转化体系的稳定性研究第60-61页
    3.4 小结第61-63页
    参考文献第63-64页
第四章 Rhodococcus erythropolis G20固定化细胞的制备及其在反应器中的转化条件研究第64-87页
    4.1 前言第64页
    4.2 材料与方法第64-69页
        4.2.1 固定化材料第64页
        4.2.2 静息细胞的制备第64-65页
        4.2.3 固定化细胞的制作第65页
        4.2.4 固定化细胞的强化第65页
        4.2.5 最佳固定条件的确定第65页
        4.2.6 最佳强化条件的确定第65-66页
            4.2.6.1 聚乙烯亚胺浓度及强化时间对固定化颗粒影响第65-66页
            4.2.6.2 聚乙烯亚胺的pH值对强化作用的影响第66页
            4.2.6.3 戊二醛浓度及交联时间对转化率的影响第66页
            4.2.6.4 聚乙烯亚胺、pH、Ca~(2+)对强化作用的复合影响第66页
        4.2.7 固定化细胞特性研究第66-67页
            4.2.7.1 固定化细胞的形态观察第66页
            4.2.7.2 转化体系的研究第66-67页
            4.2.7.3 最适温度及热稳定性研究第67页
            4.2.7.4 最佳底物浓度的确定第67页
            4.2.7.5 批次实验第67页
        4.2.8 固定化细胞在反应器中转化的初步研究第67-69页
            4.2.8.1 密集多相流反应器的初步研究第67-68页
            4.2.8.2 填充床反应器的初步研究第68-69页
    4.3 结果与讨论第69-84页
        4.3.1 正交设计法优化固定化条件第69-71页
        4.3.2 最佳强化条件的研究第71-77页
            4.3.2.1 聚乙烯亚胺浓度及强化时间对固定化颗粒的影响第71-72页
            4.3.2.2 聚乙烯亚胺的pH值对强化作用的影响第72-73页
            4.3.2.3 戊二醛浓度及交联时间对转化率的影响第73页
            4.3.2.4 聚乙烯亚胺、pH、Ca~(2+)对强化作用的复合影响第73-77页
        4.3.3 固定化细胞特性研究第77-81页
            4.3.3.1 固定化细胞的形态观察第77页
            4.3.3.2 最佳转化体系的研究第77-78页
            4.3.3.3 最适温度及热稳定性研究第78-80页
            4.3.3.4 最佳底物浓度的研究第80页
            4.3.3.5 批次实验第80-81页
        4.3.4 固定化细胞在反应器中转化的初步研究第81-84页
            4.3.4.1 密集多相流反应器中转化进程的初步研究第81-82页
            4.3.4.2 填充床反应器的初步研究第82-84页
                4.3.4.2.1 最佳温育时间及温度的确定第82页
                4.3.4.2.2 最佳流速的确定第82-83页
                4.3.4.2.3 转化体系稳定性检测第83-84页
    4.4 小结第84-86页
    参考文献第86-87页
第五章 总结与建议第87-89页
    5.1 总结第87-88页
    5.2 建议第88-89页
致谢第89-90页
攻读硕士学位期间发表的学术论文第90页

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