| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 缩略词及中英文对照 | 第9-15页 |
| 1 综述 | 第15-34页 |
| 1.1 研究背景 | 第15页 |
| 1.2 植物生长发育的影响因素 | 第15-21页 |
| 1.2.1 环境因子对植物生长发育的影响 | 第15-18页 |
| 1.2.1.1 光照 | 第16页 |
| 1.2.1.2 温度 | 第16-18页 |
| 1.2.1.3 水分 | 第18页 |
| 1.2.2 碳氮代谢对植物生长发育的影响 | 第18-21页 |
| 1.2.2.1 碳水化合物 | 第18-20页 |
| 1.2.2.2 含氮化合物 | 第20-21页 |
| 1.3 植物生长发育的途径及其基因控制 | 第21-29页 |
| 1.3.1 光周期途径 | 第21-24页 |
| 1.3.2 春化途径 | 第24-26页 |
| 1.3.3 赤霉素途径 | 第26-28页 |
| 1.3.4 自主途径 | 第28-29页 |
| 1.4 蛋白质组学简介及在植物生长发育中的应用 | 第29-32页 |
| 1.4.1 蛋白质组学的提出和研究的内容 | 第29-30页 |
| 1.4.2 蛋白质组学研究技术 | 第30-32页 |
| 1.4.3 蛋白质组学在植物生长发育上的应用 | 第32页 |
| 1.5 本课题研究的内容、目的及意义 | 第32-34页 |
| 2 材料与方法 | 第34-47页 |
| 2.1 试验材料 | 第34页 |
| 2.2 试验方法 | 第34-35页 |
| 2.3 营养液的管理 | 第35-36页 |
| 2.4 生理生化指标的测定 | 第36-47页 |
| 2.4.1 碳代谢指标的测定 | 第36-38页 |
| 2.4.1.1 可溶性糖含量的测定 | 第36页 |
| 2.4.1.2 蔗糖含量的测定 | 第36-37页 |
| 2.4.1.3 果糖含量的测定 | 第37页 |
| 2.4.1.4 还原糖含量的测定 | 第37页 |
| 2.4.1.5 中性转化酶（Neutral invertase，NI）活性的测定 | 第37页 |
| 2.4.1.6 酸性转化酶（Acid invertase，AI）活性测定 | 第37-38页 |
| 2.4.1.7 蔗糖合成酶（Sucrose Synthase，SS）活性测定 | 第38页 |
| 2.4.1.8 蔗糖磷酸合成酶（Sucrose Phosphate Synthase，SPS）活性测定 | 第38页 |
| 2.4.2 氮代谢指标的测定 | 第38-39页 |
| 2.4.2.1 可溶性蛋白含量的测定 | 第38页 |
| 2.4.2.2 游离氨基酸含量的测定 | 第38-39页 |
| 2.4.2.3 谷氨酰胺合成酶（Glutamine Synthase，GS）活性的测定 | 第39页 |
| 2.4.2.4 谷氨酸脱氢酶（Glutamate Dehydrogenase，GDH）活性的测定 | 第39页 |
| 2.4.3 低温处理下菜心生理生化及蛋白组学指标的测定 | 第39-47页 |
| 2.4.3.1 可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定 | 第39页 |
| 2.4.3.2 脯氨酸（Proline，Pro）含量的测定 | 第39-40页 |
| 2.4.3.3 丙二醛（Malondialdehyde，MDA）含量的测定 | 第40页 |
| 2.4.3.4 抗坏血酸（Ascorbic Acid，As A）含量的测定 | 第40页 |
| 2.4.3.5 还原型谷胱甘肽（Reduced Glutathione Tablets，GSH）含量的测定 | 第40页 |
| 2.4.3.6 超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase，SOD）活性的测定 | 第40-41页 |
| 2.4.3.7 过氧化物酶（Peroxidase，POD）活性的测定 | 第41页 |
| 2.4.3.8 谷胱甘肽还原酶（Glutathione Reductase，GR）活性的测定 | 第41页 |
| 2.4.3.9 抗坏血酸过氧化物酶（Aseorbateperoxidase，APX）活性的测定 | 第41页 |
| 2.4.3.10 基于iTRAQ技术的不同温度条件下花芽分化期菜心叶片蛋白质表达的分析 | 第41-47页 |
| 2.5 统计分析方法 | 第47页 |
| 3 结果与分析 | 第47-71页 |
| 3.1 不同熟性菜心品种生长发育过程中碳水化合物代谢的变化 | 第47-52页 |
| 3.1.1 不同熟性菜心品种生长发育过程中可溶性糖含量的变化 | 第47页 |
| 3.1.2 不同熟性菜心品种生长发育过程中蔗糖含量的变化 | 第47-48页 |
| 3.1.3 不同熟性菜心品种生长发育过程中果糖含量的变化 | 第48-49页 |
| 3.1.4 不同熟性菜心品种生长发育过程中还原糖含量的变化 | 第49-50页 |
| 3.1.5 不同熟性菜心品种生长发育过程转化酶活性的变化 | 第50-51页 |
| 3.1.6 不同熟性菜心品种生长发育过程中蔗糖合成酶类活性的变化 | 第51-52页 |
| 3.2 不同熟性菜心品种生长发育过程中氮代谢的变化 | 第52-55页 |
| 3.2.1 不同熟性菜心品种生长发育过程中可溶性蛋白含量的变化 | 第52-53页 |
| 3.2.2 不同熟性菜心品种生长发育过程中游离氨基酸含量的变化 | 第53-54页 |
| 3.2.3 不同熟性菜心品种生长发育过程中GS活性的变化 | 第54页 |
| 3.2.4 不同熟性菜心品种生长发育过程中GDH活性的变化 | 第54-55页 |
| 3.3 低温条件下菜心叶片生理生化和蛋白质组学分析 | 第55-71页 |
| 3.3.1 低温处理对菜心叶片生理生化的影响 | 第55-57页 |
| 3.3.1.1 低温处理对叶片可溶性糖和可溶性蛋白含量的影响 | 第55页 |
| 3.3.1.2 低温处理对叶片Pro和MDA含量的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.1.3 低温处理对叶片GSH和As A含量的影响 | 第56页 |
| 3.3.1.4 低温处理对叶片SOD和POD活性的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.1.5 低温处理对叶片APX和GR活性的影响 | 第57页 |
| 3.3.2 低温处理对叶片蛋白质组学的影响 | 第57-71页 |
| 3.3.2.1 叶片蛋白质的SDS-PAGE电泳检测 | 第57-58页 |
| 3.3.2.2 蛋白质组鉴定基本信息 | 第58-59页 |
| 3.3.2.3 差异表达蛋白的定量统计 | 第59-60页 |
| 3.3.2.4 共同差异表达蛋白的定量统计 | 第60-61页 |
| 3.3.2.5 三个不同温度处理，两两比较菜心蛋白质组GO功能分类 | 第61-64页 |
| 3.3.2.6 三个不同温度处理，两两比较菜心蛋白质组KEGG富集分析 | 第64-66页 |
| 3.3.2.7 可能与低温诱导和生长发育相关的显著差异表达蛋白功能分类 | 第66-71页 |
| 4 讨论 | 第71-82页 |
| 4.1 碳水化合物代谢与菜心生长发育的关系 | 第71-72页 |
| 4.2 氮代谢与菜心生长发育的关系 | 第72-73页 |
| 4.3 低温处理对菜心生理生化的影响 | 第73-82页 |
| 4.3.1 温度与菜心花芽分化的关系 | 第73-74页 |
| 4.3.2 低温处理对菜心叶片渗透调节物质的影响 | 第74页 |
| 4.3.3 低温处理对菜心叶片ROS代谢的影响 | 第74-75页 |
| 4.3.4 低温处理对菜心蛋白质表达的影响 | 第75-82页 |
| 4.3.4.1 菜心蛋白质组鉴定和表达概况 | 第75-76页 |
| 4.3.4.2 光合作用相关蛋白分析 | 第76-77页 |
| 4.3.4.3 糖代谢相关蛋白分析 | 第77页 |
| 4.3.4.4 氨基酸代谢相关蛋白分析 | 第77-78页 |
| 4.3.4.5 植物激素代谢相关蛋白分析 | 第78-79页 |
| 4.3.4.6 胁迫相关蛋白分析 | 第79-81页 |
| 4.3.4.7 能量相关蛋白分析 | 第81-82页 |
| 5 全文结论 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-100页 |
