| 摘要 | 第6-9页 |
| abstract | 第9-12页 |
| 文献综述 | 第17-38页 |
| 第一章 促性腺激素调控卵泡发育的研究进展 | 第17-30页 |
| 1.1 卵泡的发育过程 | 第17-20页 |
| 1.1.1 原始卵泡 | 第17-18页 |
| 1.1.2 初级卵泡 | 第18-19页 |
| 1.1.3 次级卵泡 | 第19页 |
| 1.1.4 窦状卵泡 | 第19-20页 |
| 1.2 促性腺激素在卵泡发育和排卵中的作用 | 第20-26页 |
| 1.2.1 FSH对卵泡发育的影响 | 第20-22页 |
| 1.2.2 LH诱导的排卵过程 | 第22-26页 |
| 1.3 卵泡内细胞之间的交流 | 第26-30页 |
| 1.3.1 卵母细胞分泌因子调节颗粒细胞的功能 | 第27-28页 |
| 1.3.2 卵母细胞分泌因子调节卵丘细胞功能 | 第28页 |
| 1.3.3 体细胞调控卵母细胞的成熟 | 第28-30页 |
| 第二章 BMP调节卵泡发育的研究进展 | 第30-38页 |
| 2.1 BMP亚家族成员 | 第30-31页 |
| 2.2 BMP亚家族蛋白受体 | 第31-32页 |
| 2.3 BMP亚家族蛋白信号转导 | 第32-33页 |
| 2.4 BMP在卵泡发育和排卵过程中的作用 | 第33-36页 |
| 2.4.1 BMP对卵泡发育的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.2 BMP对排卵过程的影响 | 第34-36页 |
| 2.5 BMP2调控卵泡功能的研究进展 | 第36页 |
| 2.6 研究的目的和意义 | 第36-38页 |
| 试验研究 | 第38-88页 |
| 第三章 BMP2对人颗粒细胞PTX3表达的影响及调控机制 | 第38-48页 |
| 3.1 试验材料 | 第38-39页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第38-39页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第39页 |
| 3.2 试验方法 | 第39-43页 |
| 3.2.1 原代人颗粒细胞和SVOG细胞培养 | 第39-40页 |
| 3.3.2 RNA提取和反转录PCR | 第40页 |
| 3.2.3 实时定量PCR | 第40-41页 |
| 3.2.4 Western blot | 第41-42页 |
| 3.2.5 小干扰RNA（siRNA）转染 | 第42页 |
| 3.2.6 酶联免疫法检测PTX3蛋白浓度 | 第42页 |
| 3.2.7 统计学分析 | 第42-43页 |
| 3.3 结果 | 第43-46页 |
| 3.3.1 BMP2下调颗粒细胞内PTX3的表达和蛋白的生成 | 第43-44页 |
| 3.3.2 BMP2抑制LH诱导的原代hGL细胞中PTX3表达水平的增加 | 第44页 |
| 3.3.3 DMH-1 和dorsomorphin抑制BMP2诱导的PTX3表达的下调 | 第44-45页 |
| 3.3.4 SMAD信号调节BMP2诱导的PTX3表达的下调 | 第45-46页 |
| 3.4 讨论 | 第46-48页 |
| 第四章 BMP2对人颗粒细胞BDNF表达的影响及调控机制 | 第48-58页 |
| 4.1 试验材料 | 第48-49页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第48-49页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第49页 |
| 4.2 试验方法 | 第49-50页 |
| 4.2.1 原代人颗粒细胞和SVOG细胞培养 | 第49页 |
| 4.2.2 RNA提取和逆转录PCR | 第49页 |
| 4.2.3 实时定量PCR | 第49页 |
| 4.2.4 Western blot | 第49-50页 |
| 4.2.5 小干扰RNA（siRNA）转染 | 第50页 |
| 4.2.6 酶联免疫法检测BDNF蛋白浓度 | 第50页 |
| 4.2.7 统计学分析 | 第50页 |
| 4.3 结果 | 第50-55页 |
| 4.3.1 BMP2促进SVOG和hGL细胞中BDNF mRNA的表达 | 第50-51页 |
| 4.3.2 BMP2诱导SVOG细胞中Furin表达的升高 | 第51-53页 |
| 4.3.3 ALK2/ALK3-SMAD4信号通路参与BMP2诱导的BDNF转录水平和Furin的表达水平的上调 | 第53-54页 |
| 4.3.4 Furin参与BMP2诱导的BDNF的合成过程 | 第54-55页 |
| 4.4 讨论 | 第55-58页 |
| 第五章 BMP2对人颗粒细胞透明质酸合成的影响及调控机制 | 第58-67页 |
| 5.1 试验材料 | 第58-59页 |
| 5.1.1 主要试剂 | 第58-59页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第59页 |
| 5.2 试验方法 | 第59-61页 |
| 5.2.1 原代人颗粒细胞和SVOG细胞培养 | 第59页 |
| 5.2.2 RNA提取和逆转录PCR | 第59页 |
| 5.2.3 实时定量PCR | 第59页 |
| 5.2.4 Western blot | 第59-60页 |
| 5.2.5 小干扰RNA（siRNA）转染 | 第60页 |
| 5.2.6 酶联免疫法检测CTGF和hyaluronan浓度 | 第60-61页 |
| 5.2.7 统计学分析 | 第61页 |
| 5.3 结果 | 第61-65页 |
| 5.3.1 BMP2增加颗粒细胞内HAS2 mRNA的表达水平 | 第61-62页 |
| 5.3.2 BMP2诱导颗粒细胞内结缔组织生长因子的表达水平升高 | 第62-63页 |
| 5.3.3 CTGF调节BMP2诱导的HAS2的mRNA表达水平增加 | 第63-64页 |
| 5.3.4 CTGF调节BMP2诱导的颗粒细胞内HA的合成 | 第64-65页 |
| 5.4 讨论 | 第65-67页 |
| 第六章 BMP2对人颗粒细胞TGF-β 信号通路的影响及调控机制 | 第67-74页 |
| 6.1 试验材料 | 第67-68页 |
| 6.1.1 主要试剂 | 第67-68页 |
| 6.1.2 主要仪器 | 第68页 |
| 6.2 试验方法 | 第68-69页 |
| 6.2.1 原代人颗粒细胞和SVOG细胞培养 | 第68页 |
| 6.2.2 RNA提取和逆转录PCR | 第68页 |
| 6.2.3 实时定量PCR | 第68页 |
| 6.2.4 Western blot | 第68页 |
| 6.2.5 小干扰RNA（siRNA）转染 | 第68-69页 |
| 6.2.6 统计学分析 | 第69页 |
| 6.3 结果 | 第69-72页 |
| 6.3.1 BMP2增加SVOG和hGL细胞内BAMBI的mRNA表达水平 | 第69-70页 |
| 6.3.2 BMP2通过上调BAMBI的表达从而抑制TGF-β1 诱导的SMAD2/3 磷酸化 | 第70-71页 |
| 6.3.3 BMP2通过上调BAMBI的表达从而抑制TGF-β1 诱导的MMP2的增加 | 第71-72页 |
| 6.4 讨论 | 第72-74页 |
| 第七章 BMP2调节人颗粒细胞功能的相关信号通路及分子机制 | 第74-88页 |
| 7.1 材料试剂 | 第74-75页 |
| 7.1.1 主要试剂 | 第74页 |
| 7.1.2 主要仪器 | 第74-75页 |
| 7.2 试验方法 | 第75-76页 |
| 7.2.1 原代人颗粒细胞和SVOG细胞培养 | 第75页 |
| 7.2.2 RNA提取和逆转录PCR | 第75页 |
| 7.2.3 实时定量PCR | 第75页 |
| 7.2.4 Western blot | 第75-76页 |
| 7.2.5 小干扰RNA（siRNA）转染 | 第76页 |
| 7.2.6 统计学分析 | 第76页 |
| 7.3 结果 | 第76-84页 |
| 7.3.1 BMP2诱导颗粒细胞内SMAD1/5/8 磷酸化水平增加 | 第76页 |
| 7.3.2 DMH-1 和dorsomorphin抑制BMP2诱导的人颗粒细胞内SMAD1/5/8 磷酸化反应 | 第76-77页 |
| 7.3.3 ALK2和ALK3参与BMP2诱导的SMAD1/5/8 信号通路的激活 | 第77-79页 |
| 7.3.4 BMPR2和ACVR2A参与BMP2诱导的SMAD1/5/8 信号通路的激活 | 第79-81页 |
| 7.3.5 SMAD1/5-SMAD4参与BMP2调节颗粒细胞内基因的表达 | 第81-84页 |
| 7.4 讨论 | 第84-88页 |
| 结论与创新点 | 第88-89页 |
| 下一步研究工作 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-109页 |
| 附录 | 第109-113页 |
| 缩略词表 | 第113-115页 |
| 致谢 | 第115-116页 |
| 个人简介 | 第116-118页 |
