| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-25页 |
| 1.1 人体免疫 | 第11-12页 |
| 1.1.1 天然免疫系统 | 第11-12页 |
| 1.1.2 天然免疫与细菌感染 | 第12页 |
| 1.2 Siglecs的研究进展 | 第12-20页 |
| 1.2.1 Siglecs的分子结构 | 第12-13页 |
| 1.2.2 Siglecs家族成员分类及功能 | 第13-18页 |
| 1.2.3 Siglecs与免疫治疗 | 第18-19页 |
| 1.2.4 Siglec-5与天然免疫关系研究进展 | 第19-20页 |
| 1.3 维甲酸类药物研究进展 | 第20-23页 |
| 1.3.1 维生素A及维甲酸 | 第20-21页 |
| 1.3.2 维甲酸受体及功能 | 第21-22页 |
| 1.3.3 维甲酸类药物ATRA与9-cisRA | 第22-23页 |
| 1.4 本论文的研究意义 | 第23-25页 |
| 第2章 维甲酸及受体(RAR/RXR)在Siglec—5表达调控中的作用研究 | 第25-39页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第25-27页 |
| 2.1.1 材料与购买的试剂 | 第25页 |
| 2.1.2 主要溶液配置 | 第25-27页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-33页 |
| 2.2.1 实验方案 | 第27页 |
| 2.2.2 荧光素酶报告基因检测法测定RXR及维甲酸衍生物对Siglec-5启动子活性的影响 | 第27-30页 |
| 2.2.3 Western Blot检测Siglec-5的表达 | 第30-32页 |
| 2.2.4 流式细胞仪检测ATRA、Hx531、9-cisRA对Siglec-5表达的影响 | 第32-33页 |
| 2.3 实验结果及分析 | 第33-37页 |
| 2.3.1 RXR受体激活Siglec5的启动子活性,而维甲酸及其衍生物对其启动子活性发挥抑制作用 | 第33-36页 |
| 2.3.2 Western Blot显示ATRA对Siglec-5表达抑制现象呈剂量依赖性 | 第36页 |
| 2.3.3 流式细胞术显示ATRA,9-cisRA,Hx531均可抑制U937细胞中Siglec-5的表达 | 第36-37页 |
| 2.3.4 小结 | 第37页 |
| 2.4 讨论 | 第37-39页 |
| 第3章 ATRA及其衍生物调节Siglec-5在感染性免疫中的作用研究 | 第39-51页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.1 材料与购买的试剂 | 第39页 |
| 3.1.2 主要溶液的配制 | 第39-40页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第40页 |
| 3.2 试验方法 | 第40-43页 |
| 3.2.1 实验技术路线 | 第40页 |
| 3.2.2 免疫共沉淀法研究Siglec-5对SHP-1、SHP-2蛋白的募集情况及药物处理后募集含量的变化 | 第40-41页 |
| 3.2.3 检测Siglec-5、ATRA对全血及分离获得中性粒细胞免疫活性的研究 | 第41-42页 |
| 3.2.4 ELISA法检测ATRA对巨噬细胞释放细胞因子的影响 | 第42-43页 |
| 3.3 实验结果及分析 | 第43-47页 |
| 3.3.1 ATRA对Siglec-5募集其下游SHP-1、SHP-2蛋白起抑制作用 | 第43-44页 |
| 3.3.2 ATRA可通过抑制Siglec-5表达的途径增强中性粒细胞的呼吸爆发能力 | 第44-45页 |
| 3.3.3 ATRA通过抑制Siglec-5的表达提高吞噬细胞对抗炎症的功能 | 第45-46页 |
| 3.3.4 小结 | 第46-47页 |
| 3.4 讨论 | 第47-51页 |
| 第4章 总结 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第65页 |
