| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-15页 |
| ·硝酸盐还原体系中有机污染物的微生物降解 | 第9-13页 |
| ·硝酸盐还原体系中多环芳烃的微生物降解 | 第10-11页 |
| ·硝酸盐还原体系中单环或杂环芳烃类有机物的微生物降解 | 第11页 |
| ·硝酸盐还原体系中卤代有机污染物的微生物降解 | 第11-12页 |
| ·硝酸盐还原体系中多溴联苯醚的微生物降解 | 第12-13页 |
| ·硝酸盐还原体系中毒害性有机污染物对微生物群落结构的影响 | 第13-14页 |
| ·研究目的和主要内容 | 第14-15页 |
| ·研究目的和意义 | 第14页 |
| ·主要研究内容 | 第14-15页 |
| 第二章 十溴联苯醚(BDE-209)微生物降解体系及萃取条件的优化 | 第15-28页 |
| ·材料 | 第15-16页 |
| ·菌株来源 | 第15-16页 |
| ·实验试剂 | 第16页 |
| ·实验仪器 | 第16页 |
| ·十溴联苯醚母液制备 | 第16页 |
| ·方法 | 第16-18页 |
| ·BDE-209对脱色希瓦氏菌S12生长的影响 | 第16-17页 |
| ·培养基组分与BDE-209的作用关系 | 第17页 |
| ·BDE-209及其同系物萃取方法优化 | 第17-18页 |
| ·HPLC分析条件 | 第18页 |
| ·结果与讨论 | 第18-27页 |
| ·助溶条件对微生物利用BDE-209的影响 | 第18-20页 |
| ·特定培养基成分对BDE-209特性的影响 | 第20-23页 |
| ·琥珀酸钠对BDE-209降解作用的研究 | 第23-24页 |
| ·BDE-209萃取方法的优化 | 第24-27页 |
| ·小结 | 第27-28页 |
| 第三章 硝酸盐还原菌群的BDE-209降解特性及其结构特点分析 | 第28-43页 |
| ·材料 | 第28-30页 |
| ·菌群与外源菌株来源 | 第28页 |
| ·实验试剂与仪器 | 第28-30页 |
| ·培养基 | 第30页 |
| ·方法 | 第30-34页 |
| ·BDE-209降解菌的富集驯化 | 第30页 |
| ·菌群厌氧硝酸盐还原速率的测定 | 第30-31页 |
| ·BDE-209及其代谢产物分析 | 第31页 |
| ·菌群总DNA提取和PCR扩增 | 第31-32页 |
| ·变性梯度凝胶电泳分析 | 第32页 |
| ·DNA切胶回收 | 第32页 |
| ·克隆和测序 | 第32-34页 |
| ·结果与讨论 | 第34-41页 |
| ·厌氧条件下菌群的硝酸盐还原特性 | 第34-35页 |
| ·菌群对BDE-209的降解特性 | 第35-38页 |
| ·菌群的结构组成分析 | 第38-41页 |
| ·本章小结 | 第41-43页 |
| 第四章 BDE-209降解性硝酸盐还原菌的分离鉴定及其降解特性研究 | 第43-55页 |
| ·材料 | 第43-44页 |
| ·菌群来源 | 第43页 |
| ·实验试剂 | 第43页 |
| ·培养基 | 第43-44页 |
| ·方法 | 第44-47页 |
| ·BDE-209降解实验 | 第44页 |
| ·降解菌群的单菌落分离纯化 | 第44页 |
| ·电镜观察 | 第44页 |
| ·纯菌的总DNA提取和PCR扩增 | 第44-45页 |
| ·克隆和测序 | 第45-46页 |
| ·硝酸盐还原速率的测定 | 第46-47页 |
| ·BDE-209及其代谢产物分析方法 | 第47页 |
| ·结果与讨论 | 第47-53页 |
| ·BDE-209降解性硝酸盐还原菌的分离筛选 | 第47-48页 |
| ·菌株的16S rRNA基因分析 | 第48-49页 |
| ·菌株的硝酸盐还原能力测试 | 第49-50页 |
| ·菌株的BDE-209降解特性 | 第50-53页 |
| ·小结 | 第53-55页 |
| 第五章 结论与展望 | 第55-57页 |
| ·结论 | 第55页 |
| ·展望 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 作者简历 | 第63页 |
