摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-11页 |
缩略语表(Abbreviation) | 第11-14页 |
第1章 文献综述 | 第14-25页 |
·炎症反应 | 第14-21页 |
·炎症反应机制 | 第14页 |
·炎症小体 | 第14-16页 |
·NLRP3炎症小体 | 第16页 |
·炎症反应的重要核心—1L-1β | 第16-17页 |
·IL-6 | 第17-18页 |
·IL-8 | 第18页 |
·Toll样受体与炎症反应 | 第18-20页 |
·TLR4与炎症反应 | 第20页 |
·RIG-Ⅰ样受体与炎症反应 | 第20页 |
·ROS与炎症反应 | 第20-21页 |
·K~+外流(K~+ effflux)与炎症反应 | 第21页 |
·PRRSV与炎症反应 | 第21-25页 |
·PRRSV | 第21-22页 |
·PRRSV诱导的炎症反应 | 第22-23页 |
·PRRSV编码的蛋白诱导的炎症反应 | 第23-24页 |
·PRRSV诱导炎症反应的分子机制 | 第24-25页 |
第2章 研究目的与意义 | 第25-26页 |
第3章 材料与方法 | 第26-36页 |
·试验材料 | 第26-30页 |
·细胞、毒株与菌株 | 第26页 |
·工具酶及主要试剂 | 第26-27页 |
·Western Blot所需材料 | 第27页 |
·培养基与抗生素及其配制 | 第27-28页 |
·主要缓冲液与相关试剂及其配制 | 第28-29页 |
·主要实验仪器及设备 | 第29-30页 |
·分子生物学分析软件 | 第30页 |
·试验方法 | 第30-36页 |
·PRRSV的增殖 | 第30页 |
·病毒滴度的测定 | 第30页 |
·RNA的提取及RT-PCR扩增目的片段 | 第30-31页 |
·siRNA转染(脂质体介导转染法) | 第31-32页 |
·Western Blot检测目的蛋白在真核细胞中的表达 | 第32-33页 |
·SYBR Green Ⅰ实时定量PCR | 第33页 |
·相对mRNA表达水平的计算 | 第33-34页 |
·ELISA检测细胞因子表达量 | 第34页 |
·双荧光素酶检测实验 | 第34页 |
·PRRSV的间接免疫荧光(IFA)验证 | 第34页 |
·DAPI染色 | 第34-35页 |
·激光共聚焦显微镜观察 | 第35页 |
·统计学方法 | 第35-36页 |
第4章 结果与分析 | 第36-70页 |
·高致病性PRRSV感染激活IL-1β的分子机制及其生物学意义研究 | 第36-54页 |
·PRRSV在PAM细胞中的感染动力学分析 | 第36-37页 |
·PRRSV感染显著激活IL-1β | 第37-38页 |
·PRRSV感染激活IL-1β上游信号通路的研究 | 第38-47页 |
·NLRP3炎症小体参与PRRSV感染诱导IL-1β的成熟与分泌 | 第47-49页 |
·ROS和K~+外流参与PRRSV感染诱导IL-1β的成熟与分泌 | 第49-51页 |
·TLR4/MyD88/NF-κB信号通路参与PRRSV诱导NLRP3炎症小体各元件的表达 | 第51-52页 |
·PRRSV诱导IL-1β的生物学意义 | 第52-54页 |
·PRRSV激活IL-6的分子机制研究 | 第54-61页 |
·PRRSV感染显著激活IL-6 | 第54-55页 |
·PRRSV感染激活IL-6上游信号通路的研究 | 第55-58页 |
·NLRP3炎症小体参与PRRSV感染诱导IL-6的成熟与分泌 | 第58-60页 |
·ROS和K~+外流参与PRRSV感染诱导IL-6的分泌 | 第60-61页 |
·猪源IL-6蛋白不影响PRRSV在PAM细胞中的增殖 | 第61页 |
·PRRSV激活IL-8的分子机制研究 | 第61-70页 |
·PRRSV感染显著激活IL-8 | 第61-62页 |
·PRRSV感染激活IL-8上游信号通路的研究 | 第62-66页 |
·NLRP3炎症小体参与PRRSV感染诱导IL-8的成熟与分泌 | 第66-67页 |
·ROS和K~+外流参与PRRSV感染诱导IL-8的分泌 | 第67-68页 |
·猪源IL-8蛋白不影响PRRSV在PAM细胞中的增殖 | 第68-70页 |
第5章 讨论与结论 | 第70-76页 |
·讨论 | 第70-75页 |
·PRRSV激活IL-1β的分子机制及其生物学意义研究 | 第70-73页 |
·PRRSV激活IL-6,IL-8的分子机制研究 | 第73-75页 |
·结论 | 第75-76页 |
参考文献 | 第76-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
附录 | 第88-89页 |