| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 1 研究背景 | 第11-12页 |
| 2 研究目的及意义 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-19页 |
| ·常用的细菌总RNA 提取方法及其特点 | 第13-14页 |
| ·强变性剂法 | 第13页 |
| ·TRIZOL 试剂提取法 | 第13页 |
| ·SDS-Phenol 法 | 第13-14页 |
| ·CTAB 法 | 第14页 |
| ·热硼酸法及改良热硼酸法 | 第14页 |
| ·常用的细菌总RNA 提取试剂盒 | 第14-16页 |
| ·提取出的RNA 浓度，纯度和完整性分析 | 第16页 |
| ·RNA 提取过程中的常见问题和解决方法 | 第16-17页 |
| ·内源性RNA 的污染，使得RNA 被降解 | 第16页 |
| ·外源性RNA 的污染，使得RNA 被降解 | 第16-17页 |
| ·RNA 提取技术的发展前景 | 第17-19页 |
| 第二章 四种副溶血弧菌总RNA 提取方法的比较 | 第19-27页 |
| ·前言 | 第19页 |
| ·实验材料 | 第19-20页 |
| ·菌株 | 第19-20页 |
| ·主要培养基 | 第20页 |
| ·RNA 提取试剂盒试剂盒 | 第20页 |
| ·引物 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-22页 |
| ·总RNA 提取方法 | 第20-21页 |
| ·总RNA 提取后的纯化 | 第21页 |
| ·RNA的质量检测 | 第21-22页 |
| ·RT-PCR 扩增检测 | 第22页 |
| ·结果与分析 | 第22-25页 |
| ·提取的总RNA 质量分析 | 第22-24页 |
| ·RT-PCR 鉴定结果 | 第24-25页 |
| ·讨论 | 第25-27页 |
| 第三章 半定量RT-PCR 法检测副溶血弧菌tlh 基因的表达差异 | 第27-36页 |
| ·前言 | 第27页 |
| ·实验材料 | 第27-28页 |
| ·菌株 | 第27-28页 |
| ·实验试剂 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-29页 |
| ·不同培养条件下副溶血弧菌tlh 基因表达水平比较 | 第28页 |
| ·总RNA 的提取与反转录 | 第28页 |
| ·RT-PCR 扩增检测 | 第28-29页 |
| ·结果与分析 | 第29-34页 |
| ·提取的总RNA 质量分析 | 第29-32页 |
| ·tlh 基因RT-PCR 反应结果 | 第32-33页 |
| ·tlh 基因表达差异分析 | 第33-34页 |
| ·讨论 | 第34-36页 |
| 第四章 荧光定量PCR 法检测副溶血弧菌tlh 基因的表达差异 | 第36-43页 |
| ·前言 | 第36页 |
| ·实验材料 | 第36-37页 |
| ·菌株 | 第36页 |
| ·实验试剂 | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37-38页 |
| ·不同条件下培养副溶血弧菌 | 第37页 |
| ·总RNA 的提取与反转录 | 第37页 |
| ·实时荧光定量PCR 反应检测tlh 基因的表达差异 | 第37-38页 |
| ·结果与分析 | 第38-41页 |
| ·三株副溶血弧菌在不同培养盐度和温度下生长曲线 | 第38-39页 |
| ·实时荧光定量PCR 法检测副溶血弧菌tlh 基因的表达差异 | 第39-41页 |
| ·讨论 | 第41-43页 |
| 第五章 荧光定量PCR 法检测副溶血弧菌tdh 基因的表达差异 | 第43-50页 |
| ·前言 | 第43页 |
| ·实验材料 | 第43-44页 |
| ·菌株 | 第43页 |
| ·实验试剂 | 第43-44页 |
| ·实验方法 | 第44-45页 |
| ·不同条件下培养副溶血弧菌 | 第44页 |
| ·总RNA 的提取与反转录 | 第44页 |
| ·实时荧光定量PCR 反应检测tdh 基因的表达差异 | 第44-45页 |
| ·结果与分析 | 第45-48页 |
| ·三株副溶血弧菌在不同培养盐度和温度下生长曲线 | 第45-46页 |
| ·实时荧光定量PCR 法检测副溶血弧菌tlh 基因的表达差异 | 第46-48页 |
| ·讨论 | 第48-50页 |
| 全文总结 | 第50-52页 |
| 不足与展望 | 第52-53页 |
| 本论文创新点 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章 和申请的专利 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
