| 缩略符号表 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-36页 |
| ·肿瘤的治疗现状 | 第13-14页 |
| ·抗肿瘤多糖 | 第14-19页 |
| ·抗肿瘤多糖的种类及作用效果 | 第14-15页 |
| ·抗肿瘤多糖的作用机理 | 第15-16页 |
| ·影响多糖抗肿瘤作用的因素 | 第16-18页 |
| ·抗肿瘤免疫多糖类药物的开发利用现状 | 第18-19页 |
| ·姬松茸的研究现状 | 第19-27页 |
| ·姬松茸的生物学特征 | 第19-20页 |
| ·姬松茸的液体发酵培养 | 第20页 |
| ·姬松茸的营养价值 | 第20-21页 |
| ·姬松茸的生物活性功能 | 第21-23页 |
| ·姬松茸抗肿瘤多糖的研究 | 第23-27页 |
| ·本课题的立题背景与意义 | 第27页 |
| ·本论文的主要研究内容 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-36页 |
| 第二章 菌丝体多糖的提取及活性组分的筛选 | 第36-52页 |
| ·前言 | 第36-37页 |
| ·菌丝体的发酵制备及成份分析 | 第37-39页 |
| ·材料与方法 | 第37页 |
| ·实验设备 | 第37-38页 |
| ·结果与讨论 | 第38-39页 |
| ·姬松茸发酵罐深层发酵基本特性比较 | 第38页 |
| ·姬松茸深层发酵菌丝体的基本营养成分分析 | 第38-39页 |
| ·菌丝体多糖的提取分离及物化特性的研究 | 第39-42页 |
| ·材料与方法 | 第39-40页 |
| ·结果与讨论 | 第40-42页 |
| ·姬松茸菌丝体提取物的得率及组成 | 第40-41页 |
| ·姬松茸菌丝体提取物的颜色及溶解特性 | 第41页 |
| ·姬松茸菌丝体提取物的单糖组成 | 第41-42页 |
| ·菌丝体提取物的生理活性测定 | 第42-50页 |
| ·实验材料 | 第42-43页 |
| ·实验设备 | 第43页 |
| ·活性测定方法 | 第43-44页 |
| ·数据分析 | 第44页 |
| ·结果与讨论 | 第44-50页 |
| ·姬松茸菌丝体水溶性提取物的体外活性实验 | 第44-47页 |
| ·姬松茸菌丝体提取物的体内抗肿瘤效果的综合评价 | 第47-50页 |
| ·本章小结 | 第50页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
| 第三章 菌丝体多糖的热水提取工艺研究 | 第52-65页 |
| ·前言 | 第52页 |
| ·材料与方法 | 第52-53页 |
| ·实验材料 | 第52-53页 |
| ·仪器与设备 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53页 |
| ·结果与讨论 | 第53-63页 |
| ·影响姬松茸菌丝体水提多糖的单因子实验 | 第53-58页 |
| ·提取分离工艺参数的RSA 优化 | 第58-60页 |
| ·菌丝体的热水提取粗多糖组分与五种市售真菌粗多糖的体外活性比较 | 第60-63页 |
| ·本章小结 | 第63页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
| 第四章 菌丝体水提多糖(HWSP)的分离纯化及构效关系初步探讨 | 第65-88页 |
| ·前言 | 第65页 |
| ·姬松茸菌丝体水提物中活性组分的乙醇分级初筛 | 第65-68页 |
| ·材料与方法 | 第65页 |
| ·结果与讨论 | 第65-68页 |
| ·乙醇分级沉淀组分的得率及多糖、蛋白质的组成 | 第65-66页 |
| ·乙醇分级沉淀组分的体外生理活性实验 | 第66-68页 |
| ·HWSP30 中活性组分的分离纯化、理化性质及构效关系的研究 | 第68-85页 |
| ·实验材料 | 第68页 |
| ·实验仪器 | 第68页 |
| ·实验方法 | 第68-69页 |
| ·结果与讨论 | 第69-85页 |
| ·HWSP30 组分的脱蛋白处理 | 第69-71页 |
| ·DP-HWSP30 的离子交换柱层析分离 | 第71-72页 |
| ·DP-HWSP30-2 的凝胶柱层析分离 | 第72-73页 |
| ·DP-HWSP30-21 组分的纯度鉴定 | 第73-74页 |
| ·DP-HWSP30-21 相对分子质量的测定 | 第74-75页 |
| ·DP-HWSP30-21 化学组成 | 第75-76页 |
| ·DP-HWSP30-21 红外光谱分析 | 第76-77页 |
| ·DP-HWSP30-21 中糖肽键的鉴定 | 第77-79页 |
| ·DP-HWSP30-21 组分构效关系的初步探讨 | 第79-81页 |
| ·DP-HWSP30-21 与HWSP85 组分间得率及活性的归纳比较 | 第81-85页 |
| ·本章小节 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-88页 |
| 第五章 菌丝体冷碱提多糖(CAWSP)的分离纯化及一级结构研究 | 第88-106页 |
| ·前言 | 第88页 |
| ·材料与设备 | 第88-90页 |
| ·结果与讨论 | 第90-103页 |
| ·CAWSP 离子交换分离纯化及活性成份筛选 | 第90-92页 |
| ·CAWSP-2 组分的凝胶柱层析分离纯化及活性成份筛选 | 第92-93页 |
| ·CAWSP-211 组分的纯度鉴定 | 第93-95页 |
| ·CAWSP-211 组分的紫外扫描图谱 | 第95-96页 |
| ·CAWSP-211 组分相对分子质量的测定 | 第96-97页 |
| ·CAWSP-211 组分的红外光谱 | 第97页 |
| ·CAWSP-211 组分的单糖组成 | 第97-98页 |
| ·CAWSP-211 组分的核磁图谱 | 第98-103页 |
| ·本章小结 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-106页 |
| 第六章 羧甲基冷碱提取多糖(CAASP)的制备及生物活性的研究 | 第106-126页 |
| ·前言 | 第106页 |
| ·CAASP 羧甲基化产物取代度的测定方法研究 | 第106-110页 |
| ·实验材料 | 第107页 |
| ·实验设备 | 第107页 |
| ·实验方法 | 第107-108页 |
| ·结果与讨论 | 第108-110页 |
| ·羧甲基化CAASP 制备工艺的研究 | 第110-116页 |
| ·实验材料 | 第111页 |
| ·实验设备 | 第111页 |
| ·实验方法 | 第111页 |
| ·结果与讨论 | 第111-116页 |
| ·一氯乙酸用量对羧甲基化产物取代度及得率的影响 | 第111-112页 |
| ·氢氧化钠与一氯乙酸摩尔比例对羧甲基产物化取代度及得率的影响 | 第112-113页 |
| ·微波辐照反应时间对羧甲基化产物取代度和得率的影响 | 第113页 |
| ·反应体系总含水量对羧甲基化产物取代度和得率的影响 | 第113-114页 |
| ·碱化时间对羧甲基化产物取代度和得率的影响 | 第114-115页 |
| ·羧甲基化CAASP 的取代度与溶解性的关系 | 第115-116页 |
| ·羧甲基化CAASP(DS=0.070)的制备工艺确定 | 第116页 |
| ·CM-CAASP 的体内外生理活性 | 第116-121页 |
| ·体外活性试验 | 第117页 |
| ·体内活性试验 | 第117页 |
| ·结果与讨论 | 第117-121页 |
| ·体外活性实验 | 第117-120页 |
| ·体内活性试验 | 第120-121页 |
| ·急性毒理试验 | 第121-122页 |
| ·试验材料 | 第121页 |
| ·试验动物 | 第121页 |
| ·试验方法 | 第121页 |
| ·观测项目 | 第121页 |
| ·结果与讨论 | 第121-122页 |
| ·本章小结 | 第122-123页 |
| 参考文献 | 第123-126页 |
| 主要结论 | 第126-128页 |
| 论文创新点 | 第128-129页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第129-130页 |
| 致谢 | 第130页 |
