| 中文摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 英文缩略词表 | 第15-17页 |
| 前言 | 第17-20页 |
| 第一章 CPB及其代谢物H152/81体内定量分析方法的建立 | 第20-56页 |
| 1 仪器和材料 | 第20-21页 |
| 1.1 仪器 | 第20-21页 |
| 1.2 试药 | 第21页 |
| 1.3 生物样品的来源 | 第21页 |
| 2 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.1 生物样品前处理 | 第21-22页 |
| 2.1.1 Beagle犬血浆样品 | 第21-22页 |
| 2.1.2 SD大鼠组织分布样品 | 第22页 |
| 2.2 分析条件 | 第22-23页 |
| 2.2.1 色谱条件 | 第22页 |
| 2.2.2 质谱条件 | 第22-23页 |
| 3 Beagle犬血浆及SD大鼠组织分布样品分析方法学考察 | 第23-24页 |
| 3.1 Beagle犬血浆及SD大鼠组织样品中CPB及其代谢物H152/81标曲的制备 | 第23页 |
| 3.1.1 Beagle犬血浆样品中CPB及其代谢物H152/81标准曲线的制备 | 第23页 |
| 3.1.2 SD大鼠组织样品中CPB及其代谢物H152/81标准曲线的制备 | 第23页 |
| 3.2 精密度及准确度的考察 | 第23页 |
| 3.3 基质效应和绝对回收的率考察 | 第23-24页 |
| 3.4 分析方法的稀释效应考察 | 第24页 |
| 3.5 分析方法的稳定性考察 | 第24页 |
| 4 Beagle犬血浆样品方法学评价及结果 | 第24-32页 |
| 4.1 方法专属性 | 第24-26页 |
| 4.2 线性范围和定量下限 | 第26-28页 |
| 4.3 精密度及相对回收率考察 | 第28-29页 |
| 4.4 绝对回收率和基质效应考察 | 第29页 |
| 4.5 稀释效应考察 | 第29-30页 |
| 4.6 分析样品的稳定性考察 | 第30-32页 |
| 5 SD大鼠组织分布样品分析方法学评价及结果 | 第32-52页 |
| 5.1 方法专属性 | 第32-36页 |
| 5.2 线性范围和定量下限 | 第36-41页 |
| 5.2.1 SD大鼠心组织线性范围和定量下限 | 第36-38页 |
| 5.2.2 SD大鼠肝组织线性范围和定量下限 | 第38-39页 |
| 5.2.3 SD大鼠脑组织线性范围和定量下限 | 第39-41页 |
| 5.3 分析方法的日内日间精密度和相对回收率考察 | 第41-44页 |
| 5.3.1 SD大鼠心组织样品分析方法的日内日间精密度和相对回收率考察 | 第41-42页 |
| 5.3.2 SD大鼠肝组织样品分析方法的日内日间精密度和相对回收率考察 | 第42-43页 |
| 5.3.3 SD大鼠脑组织样品分析方法的日内日间精密度和相对回收率考察 | 第43-44页 |
| 5.4 绝对回收率和基质效应考察 | 第44-46页 |
| 5.4.1 SD大鼠心组织绝对回收率和基质效应考察 | 第44页 |
| 5.4.2 SD大鼠肝组织绝对回收率和基质效应考察 | 第44-45页 |
| 5.4.3 SD大鼠脑组织绝对回收率和基质效应考察 | 第45-46页 |
| 5.5 稀释效应考察 | 第46-48页 |
| 5.5.1 SD大鼠心组织稀释效应考察 | 第46-47页 |
| 5.5.2 SD大鼠肝组织稀释效应考察 | 第47页 |
| 5.5.3 SD大鼠脑组织稀释效应考察 | 第47-48页 |
| 5.6 分析样品的稳定性考察 | 第48-52页 |
| 5.6.1 SD大鼠心组织分析样品的稳定性考察 | 第48-49页 |
| 5.6.2 SD大鼠肝组织分析样品的稳定性考察 | 第49-50页 |
| 5.6.3 SD大鼠脑组织分析样品的稳定性考察 | 第50-52页 |
| 6 讨论 | 第52-55页 |
| 6.1 LC-MS/MS分析方法的确立 | 第52-53页 |
| 6.1.1 质谱条件的建立 | 第52-53页 |
| 6.1.2 色谱条件的建立 | 第53页 |
| 6.2 样品前处理 | 第53-54页 |
| 6.3 分析方法评价指标 | 第54-55页 |
| 7 小结 | 第55-56页 |
| 第二章 Cleviprex在Beagle犬体内的药代动力学研究 | 第56-95页 |
| 1 仪器和材料 | 第56-57页 |
| 1.1 仪器 | 第56页 |
| 1.2 试药 | 第56-57页 |
| 1.3 .实验动物 | 第57页 |
| 2 实验方法 | 第57-59页 |
| 2.1 动物给药方案与取血 | 第57-58页 |
| 2.2 样品处理与分析 | 第58页 |
| 2.3 数据分析 | 第58-59页 |
| 2.3.1 Non-compartmentmodel法(统计矩法)分析 | 第58页 |
| 2.3.2 相对生物利用度估算 | 第58页 |
| 2.3.3 数据统计分析 | 第58-59页 |
| 3 结果 | 第59-92页 |
| 3.1 CPB、H152/81血浆样品测定的随行标准曲线制备与QC样品评价 | 第59-63页 |
| 3.1.1 CPB、H152/81随行标准溶液的配制 | 第59-60页 |
| 3.1.2 CPB、H152/81随行标曲QC样品配制 | 第60-63页 |
| 3.2 CPB、H152/81在Beagle犬体内的血药浓度-时间数据 | 第63-81页 |
| 3.3 CPB、H152/81在Beagle犬体内的药代动力学参数 | 第81-83页 |
| 3.4 不同剂量组静脉推注Cleviprex后药代动力学的线性相关性研究 | 第83-86页 |
| 3.5 CPB的相对生物利用度估算 | 第86-88页 |
| 3.6 CPB的数据统计分析结果 | 第88-92页 |
| 4 讨论与小结 | 第92-95页 |
| 第三章 Cleviprex在SD大鼠体内的组织分布研究 | 第95-109页 |
| 1 仪器和材料 | 第95-96页 |
| 1.1 仪器 | 第95页 |
| 1.2 试药 | 第95-96页 |
| 1.3 实验动物 | 第96页 |
| 2 实验方法 | 第96-97页 |
| 2.1 动物给药方案与取样 | 第96页 |
| 2.2 样品处理与分析 | 第96-97页 |
| 2.3 数据分析 | 第97页 |
| 3 结果 | 第97-108页 |
| 3.1 CPB、H152/81组织样品测定的随行标准曲线制备与QC样品评价 | 第97-108页 |
| 3.1.1 CPB、H152/81随行标准溶液的配制 | 第97-99页 |
| 3.1.2 CPB、H152/81随行标曲QC样品配制 | 第99-108页 |
| 4 讨论与小结 | 第108-109页 |
| 第四章 全文总结 | 第109-112页 |
| 参考文献 | 第112-116页 |
| 综述 | 第116-125页 |
| 参考文献 | 第122-125页 |
| 作者简介 | 第125-126页 |
| 攻读硕士学位期间发表文章情况 | 第126-127页 |
| 致谢 | 第127页 |
