| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 英文缩略语 | 第9-14页 |
| 第一部分：糖尿病视网膜病变患者血清中特异性microRNA筛选和验证的临床研究 | 第14-34页 |
| 1 前言 | 第14-15页 |
| 2 材料和方法 | 第15-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第15-17页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第15页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第15-16页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第16-17页 |
| 2.1.4 芯片信息 | 第17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-22页 |
| 2.2.1 研究分组 | 第17页 |
| 2.2.2 标本采集 | 第17-18页 |
| 2.2.3 miRNA表达谱检测 | 第18-20页 |
| 2.2.4 血清miRNA定量分析 | 第20-22页 |
| 2.3 生物信息学分析 | 第22-23页 |
| 2.3.1 miR-211靶基因预测 | 第22页 |
| 2.3.2 候选miRNA靶基因的GO功能富集分析 | 第22-23页 |
| 2.3.3 候选miRNA靶基因的KEGG信号通路分析 | 第23页 |
| 2.4 统计学分析 | 第23-24页 |
| 3 结果 | 第24-31页 |
| 3.1 临床基线资料 | 第24-25页 |
| 3.2 miRNA芯片检测结果 | 第25-26页 |
| 3.3 候选miRNA的相对表达量 | 第26-27页 |
| 3.4 候选miRNA的诊断效能 | 第27-28页 |
| 3.5 生物信息学分析结果 | 第28-31页 |
| 4 讨论 | 第31-33页 |
| 5 结论 | 第33-34页 |
| 第二部分：高糖环境中microRNA-211调节Sirtuin1表达的体内和体外的实验研究 | 第34-61页 |
| 1 前言 | 第34-35页 |
| 2 材料和方法 | 第35-52页 |
| 2.1 实验材料 | 第35-37页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第35页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第35-36页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第36-37页 |
| 2.2 实验方法 | 第37-51页 |
| 2.2.1 动物分组 | 第37-38页 |
| 2.2.2 动物模型 | 第38页 |
| 2.2.3 组织制备 | 第38页 |
| 2.2.4 视网膜形态学特征观察 | 第38-39页 |
| 2.2.5 视网膜组织学特征观察 | 第39-40页 |
| 2.2.6 视网膜组织miRNA检测 | 第40-42页 |
| 2.2.7 视网膜组织mRNA检测 | 第42-43页 |
| 2.2.8 视网膜组织蛋白检测 | 第43-45页 |
| 2.2.9 细胞培养 | 第45页 |
| 2.2.10 细胞分组 | 第45-46页 |
| 2.2.11 细胞转染 | 第46页 |
| 2.2.12 miRNA及其靶基因鉴定 | 第46页 |
| 2.2.13 细胞活力检测 | 第46-47页 |
| 2.2.14 细胞凋亡检测 | 第47-48页 |
| 2.2.15 HUVECmRNA检测 | 第48-49页 |
| 2.2.16 HUVEC蛋白检测 | 第49-51页 |
| 2.3 统计学分析 | 第51-52页 |
| 3 结果 | 第52-58页 |
| 3.1 实验动物一般情况 | 第52页 |
| 3.2 糖尿病环境中视网膜形态学变化 | 第52-53页 |
| 3.3 糖尿病环境中视网膜组织学变化 | 第53页 |
| 3.4 糖尿病环境中视网膜miR-211和SIRT1水平的变化 | 第53-55页 |
| 3.5 miR-211靶向结合SIRT1 | 第55页 |
| 3.6 高糖环境中miR-211对HUVEC生物学行为的影响 | 第55-57页 |
| 3.7 高糖环境中HUVECmiR-211对SIRT1表达的影响 | 第57-58页 |
| 4 讨论 | 第58-60页 |
| 5.结论 | 第60-61页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 综述 | 第68-77页 |
| 参考文献 | 第73-77页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 个人简介 | 第79页 |
