| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-22页 |
| 1.1 柑橘产业现状 | 第13页 |
| 1.2 柑橘采后主要侵染性病害及症状 | 第13页 |
| 1.3 柑橘采后青绿霉病的侵染特性 | 第13-14页 |
| 1.3.1 侵染途径 | 第13-14页 |
| 1.3.2 侵染条件 | 第14页 |
| 1.4 植物病原菌的致病机制研究 | 第14-21页 |
| 1.4.1 细胞壁降解酶 | 第14-17页 |
| 1.4.2 酸碱物质及pH调节 | 第17-18页 |
| 1.4.3 毒素 | 第18-19页 |
| 1.4.4 效应因子 | 第19页 |
| 1.4.5 P.expansum致病机制的研究进展 | 第19-21页 |
| 1.5 论文的研究目的及意义 | 第21-22页 |
| 第二章 柑橘中产CIT致病菌的筛选与鉴定 | 第22-34页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 材料与方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第23页 |
| 2.2.3 培养基 | 第23页 |
| 2.2.4 柑橘果实 | 第23页 |
| 2.2.5 菌种来源 | 第23页 |
| 2.2.6 柑橘上致病菌的分离纯化 | 第23页 |
| 2.2.7 菌悬液的制备 | 第23页 |
| 2.2.8 致病菌的形态学鉴定 | 第23-24页 |
| 2.2.9 分子生物学鉴定 | 第24-25页 |
| 2.2.10 高效液相色谱检测产CIT致病菌 | 第25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-33页 |
| 2.3.1 致病菌的分离纯化 | 第25页 |
| 2.3.2 菌株H1的形态学观察 | 第25-26页 |
| 2.3.3 菌株H1的分子生物学鉴定 | 第26-30页 |
| 2.3.4 高效液相色谱检测菌株的CIT含量 | 第30-33页 |
| 2.4 讨论 | 第33-34页 |
| 第三章 不同因素对P.expansumH1侵染柑橘能力的影响 | 第34-39页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 材料与方法 | 第34-35页 |
| 3.2.1 主要仪器 | 第34页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第34页 |
| 3.2.3 柑橘果实 | 第34页 |
| 3.2.4 菌悬液的制备 | 第34页 |
| 3.2.5 温度对P.expansumH1侵染柑橘能力的影响 | 第34-35页 |
| 3.2.6 保湿时间对P.expansumH1侵染柑橘能力的影响 | 第35页 |
| 3.2.7 菌龄对P.expansumH1侵染柑橘能力的影响 | 第35页 |
| 3.3 结果与分析 | 第35-38页 |
| 3.3.1 温度对P.expansumH1侵染柑橘能力的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.2 保湿时间对P.expansumH1侵染柑橘能力的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.3 菌龄对P.expansumH1侵染柑橘能力的影响 | 第37-38页 |
| 3.4 讨论 | 第38-39页 |
| 第四章 P.expansumH1侵染柑橘机理的研究 | 第39-53页 |
| 4.1 引言 | 第39页 |
| 4.2 材料与方法 | 第39-42页 |
| 4.2.1 主要仪器 | 第39页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第39页 |
| 4.2.3 培养基 | 第39-40页 |
| 4.2.4 柑橘果实 | 第40页 |
| 4.2.5 菌悬液的制备 | 第40页 |
| 4.2.6 细胞壁降解酶的提取及活性测定 | 第40-41页 |
| 4.2.7 CIT及P.expansumH1对柑橘果实的影响 | 第41-42页 |
| 4.2.8 环境条件对P.expansumH1生长和产毒的影响 | 第42页 |
| 4.3 结果与分析 | 第42-50页 |
| 4.3.1 体外细胞壁降解酶的活性 | 第42-44页 |
| 4.3.2 柑橘果实上细胞壁降解酶的活性 | 第44-46页 |
| 4.3.3 CIT及P.expansumH1对柑橘果实的影响 | 第46-47页 |
| 4.3.4 培养基对P.expansumH1生长和产毒的影响 | 第47-48页 |
| 4.3.5 温度对P.expansumH1生长和产毒的影响 | 第48页 |
| 4.3.6 pH对P.expansumH1生长和产毒的影响 | 第48-49页 |
| 4.3.7 溶氧量对P.expansumH1生长和产毒的影响 | 第49页 |
| 4.3.8 培养时间对P.expansumH1生长和产毒的影响 | 第49-50页 |
| 4.4 讨论 | 第50-53页 |
| 第五章 P.expansumH1侵染柑橘后转录组分析 | 第53-64页 |
| 5.1 引言 | 第53页 |
| 5.2 材料与方法 | 第53-55页 |
| 5.2.1 主要仪器 | 第53页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第53页 |
| 5.2.3 柑橘果实 | 第53页 |
| 5.2.4 菌悬液的制备 | 第53页 |
| 5.2.5 试验材料 | 第53-54页 |
| 5.2.6 P.expansumH1总RNA的提取 | 第54页 |
| 5.2.7 生物信息学分析 | 第54页 |
| 5.2.8 RT-qPCR验证差异表达基因 | 第54-55页 |
| 5.3 结果与分析 | 第55-62页 |
| 5.3.1 测序碱基质量值 | 第55页 |
| 5.3.2 测序数据产出分析 | 第55-56页 |
| 5.3.3 差异表达基因的筛选 | 第56页 |
| 5.3.4 差异表达基因的GO富集分析 | 第56-57页 |
| 5.3.5 差异表达基因COG分类 | 第57-58页 |
| 5.3.6 差异表达基因KEGG注释 | 第58页 |
| 5.3.7 RT-qPCR验证 | 第58-62页 |
| 5.4 讨论 | 第62-64页 |
| 第六章 结论与展望 | 第64-66页 |
| 6.1 结论 | 第64页 |
| 6.2 展望 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-74页 |
| 致谢 | 第74-76页 |
| 攻读硕士期间发表论文 | 第76页 |
