| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-23页 |
| 1.1 甘蓝型油菜及其农业生产现状 | 第12页 |
| 1.2 茎尖分生组织决定地上器官的形态 | 第12-13页 |
| 1.3 茎尖分生组织的发育和调控机制 | 第13-16页 |
| 1.3.1 茎尖分生组织的形成 | 第13-14页 |
| 1.3.2 茎尖分生组织的转录调控 | 第14-15页 |
| 1.3.3 细胞分裂素对茎尖分生组织的调控 | 第15-16页 |
| 1.3.4 其它因素对SAM的影响 | 第16页 |
| 1.4 细胞分裂素的合成和代谢 | 第16-18页 |
| 1.4.1 细胞分裂素合成的分子机制 | 第16-18页 |
| 1.4.2 细胞分裂素的代谢 | 第18页 |
| 1.5 细胞分裂素的信号转导 | 第18-21页 |
| 1.5.1 组氨酸激酶感知胞外CK信号 | 第18-19页 |
| 1.5.2 CK信号在细胞质中的传递 | 第19-20页 |
| 1.5.3 响应调节因子接收CK信号 | 第20-21页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第21页 |
| 1.7 研究内容和技术路线 | 第21-23页 |
| 1.7.1 主要研究内容 | 第21-22页 |
| 1.7.2 技术路线 | 第22-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.2 实验试剂和溶液配制 | 第23-27页 |
| 2.2.1 石蜡切片所需试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.2 RNA测序所需试剂 | 第24页 |
| 2.2.3 二维电泳所需试剂与溶液 | 第24-26页 |
| 2.2.4 实时荧光定量PCR所需试剂 | 第26-27页 |
| 2.3 实验仪器 | 第27页 |
| 2.4 方法与步骤 | 第27-40页 |
| 2.4.1 多主茎甘蓝型油菜突变体dt表型分析 | 第27页 |
| 2.4.2 苗期叶片数量变化分析 | 第27-28页 |
| 2.4.3 茎尖分生组织石蜡切片 | 第28-29页 |
| 2.4.4 RNA测序和转录组分析 | 第29-32页 |
| 2.4.5 CK含量检测 | 第32页 |
| 2.4.6 二维电泳及蛋白质组学分析 | 第32-36页 |
| 2.4.7 qPCR验证RNA测序和二维电泳结果 | 第36-40页 |
| 第三章 结果与分析 | 第40-59页 |
| 3.1 dt突变体表型分析 | 第40-41页 |
| 3.2 苗期叶片数量变化分析 | 第41-42页 |
| 3.3 SAM组织切片分析 | 第42-44页 |
| 3.4 dt突变体SAM转录组学分析 | 第44-49页 |
| 3.4.1 差异显著基因筛选 | 第44-45页 |
| 3.4.2 差异显著基因的GeneOntology富集分析 | 第45页 |
| 3.4.3 差异显著基因的KEGGPathway分析 | 第45-47页 |
| 3.4.4 茎尖分生组织发育及CK合成和信号转导相关基因分析 | 第47-49页 |
| 3.5 茎尖分生组织CK含量检测 | 第49-50页 |
| 3.6 dt突变体SAM蛋白质组学分析 | 第50-55页 |
| 3.6.1 差异蛋白的筛选和质谱分析 | 第50-53页 |
| 3.6.2 差异蛋白GO富集分析和KEGGPathway分析 | 第53页 |
| 3.6.3 差异蛋白互作分析 | 第53-55页 |
| 3.7 qPCR验证RNA测序和二维电泳结果 | 第55-59页 |
| 3.7.1 RNA测序结果的qPCR验证 | 第55-57页 |
| 3.7.2 二维电泳结果的qPCR验证 | 第57-59页 |
| 第四章 总结与讨论 | 第59-64页 |
| 4.1 dt突变体茎尖分生组织异常发育导致了表型的差异 | 第59页 |
| 4.2 dt突变体茎尖分生组织发育调控基因发生显著变化 | 第59-61页 |
| 4.3 蛋白表达差异对dt突变体茎尖发育的影响 | 第61-64页 |
| 4.3.1 差异蛋白主要参与能量代谢、细胞骨架组装及ROS代谢 | 第61-62页 |
| 4.3.2 差异蛋白之间的互作关系 | 第62-64页 |
| 第五章 结论与展望 | 第64-66页 |
| 5.1 主要工作总结 | 第64-65页 |
| 5.2 展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-74页 |
| 致谢 | 第74-76页 |
| 在学期间发表的学术论文及其他科研成果 | 第76-77页 |
| 附录 | 第77-78页 |
