| 摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第10-17页 |
| 1.1 植物应答UVB辐射增强 | 第10-13页 |
| 1.2 植物苯丙氨酸解氨酶和丙氨酸解氨酶基因 | 第13页 |
| 1.3 UV-B辐射增强、硅营养对植物的影响 | 第13-17页 |
| 1.3.1 UV-B辐射增强对植物的影响 | 第13-15页 |
| 1.3.2 硅营养对植物的影响 | 第15-17页 |
| 1.3.3 Lsi1与PAL及UV-B辐射的关系 | 第17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-25页 |
| 2.1 材料 | 第17-18页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.1.2 主要试剂及试剂盒 | 第18页 |
| 2.2 材料种植 | 第18页 |
| 2.3 试验方法 | 第18-25页 |
| 2.3.1 水稻叶片DNA提取及纯化 | 第18-19页 |
| 2.3.2 Tail-PCR | 第19-21页 |
| 2.3.3 水稻叶片硅含量测定 | 第21页 |
| 2.3.4 电镜观察水稻叶片表面硅质乳突 | 第21页 |
| 2.3.5 生理指标测定 | 第21-22页 |
| 2.3.6 qRT-PCR检侧PAL基因家族在水稻叶片的表达变化 | 第22页 |
| 2.3.7 水稻叶片全蛋白提取 | 第22-23页 |
| 2.3.8 水稻叶片全蛋白双向电泳 | 第23-25页 |
| 2.3.8.1 IEF | 第23页 |
| 2.3.8.2 第二向电泳SDS-PAGE | 第23页 |
| 2.3.8.3 2-DE胶的染色、脱色及扫描 | 第23-24页 |
| 2.3.8.4 蛋白差异点的分析 | 第24页 |
| 2.3.8.5 蛋白差异点酶解 | 第24页 |
| 2.3.8.6 蛋白差异点质谱鉴定 | 第24-25页 |
| 2.3.8.7 差异蛋白GO分析 | 第25页 |
| 3 结果分析 | 第25-45页 |
| 3.1 Tail-PCR测序结果及Blast分析 | 第25-26页 |
| 3.2 水稻叶片硅含量测定 | 第26页 |
| 3.3 Dular水稻及其Lsi1过表达的转基因水稻叶片的电子显微镜扫描结果 | 第26-27页 |
| 3.4 UV-B胁迫前后,不同水稻的生理酶活性及抗氧化物含量变化 | 第27-34页 |
| 3.4.1 抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性变化 | 第27-28页 |
| 3.4.2 超氧化物歧化酶(SOD)活性变化 | 第28-29页 |
| 3.4.3 过氧化物酶(POD)活性变化 | 第29-30页 |
| 3.4.4 脯氨酸(Pro)含量变化 | 第30-31页 |
| 3.4.5 丙二醛(MDA)含量变化 | 第31-32页 |
| 3.4.6 苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性变化 | 第32-33页 |
| 3.4.7 总酚含量变化 | 第33-34页 |
| 3.4.8 类黄酮含量变化 | 第34页 |
| 3.5 qRT-PCR检测水稻叶片PAL基因家族的表达变化 | 第34-38页 |
| 3.5.1 UV-B辐射下,野生型Lemont、Dular较其自然光照条件下PAL基因家族表达差异 | 第35-36页 |
| 3.5.2 进一步研究各水稻在不同处理下PAL8及PAL10的动态表达情况 | 第36-38页 |
| 3.6 双向电泳 | 第38-45页 |
| 3.6.1 水稻叶片全蛋白提取 | 第38页 |
| 3.6.2 双向电泳差异点分析 | 第38-39页 |
| 3.6.3 差异蛋白点质谱鉴定结果及分析 | 第39-45页 |
| 4 讨论 | 第45-48页 |
| 5 结论 | 第48页 |
| 6 展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-63页 |
| 附录 | 第63-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
