| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 插图和附表清单 | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第10-25页 |
| 1.1 蜘蛛丝的简介 | 第10-20页 |
| 1.1.1 蜘蛛丝的分类及功能 | 第11页 |
| 1.1.2 蜘蛛丝的分子结构及性能 | 第11-15页 |
| 1.1.3 重组蜘蛛丝蛋白的表达 | 第15-18页 |
| 1.1.4 蜘蛛丝的应用前景 | 第18-20页 |
| 1.2 多克隆抗体的发展及应用 | 第20-24页 |
| 1.2.1 多克隆抗体的发展 | 第20-23页 |
| 1.2.2 多克隆抗体的应用 | 第23-24页 |
| 1.3 本研究的目的及意义 | 第24-25页 |
| 2 拟蜘蛛牵丝蛋白基因单体(S)及二聚体(2S)的合成 | 第25-31页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第25-29页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第25页 |
| 2.1.2 实验仪器、设备及耗材 | 第25页 |
| 2.1.3 实验设计 | 第25-27页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第27-29页 |
| 2.2 实验结果与分析 | 第29-30页 |
| 2.2.1 拟蜘蛛牵丝蛋白基因单体(S)的合成 | 第29-30页 |
| 2.2.2 拟蜘蛛牵丝蛋白基因二聚体(2S)的形成 | 第30页 |
| 2.3 讨论 | 第30-31页 |
| 3 拟蜘蛛牵丝蛋白基因单体(S)及二聚体(2S)原核表达载体的构建 | 第31-35页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第31-33页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第31页 |
| 3.1.2 实验仪器、设备及耗材 | 第31-32页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第32-33页 |
| 3.2 实验结果与分析 | 第33-34页 |
| 3.2.1 原核表达载体pGEX-S、pGEX-2S的构建和酶切鉴定 | 第33-34页 |
| 3.2.2 质粒pGEX-S、pGEX-2S的测序 | 第34页 |
| 3.3 讨论 | 第34-35页 |
| 4 pGEX-S和pGEX-2S的诱导表达、纯化及S-GST的多克隆抗体制备 | 第35-47页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第35-41页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第35-36页 |
| 4.1.2 实验仪器、设备及耗材 | 第36页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第36-41页 |
| 4.2 实验结果与分析 | 第41-46页 |
| 4.2.1 不同诱导时间和IPTG浓度表达量的差异 | 第41页 |
| 4.2.2 pGEX-S-6、pGEX-2S-5的诱导表达 | 第41-43页 |
| 4.2.3 重组拟蜘蛛牵丝蛋白S-GST多克隆抗体的制备 | 第43-46页 |
| 4.3 讨论 | 第46-47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 附录 | 第56-60页 |
| 作者简介 | 第60页 |
