| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-24页 |
| 1.1 微生物混菌体系的研究 | 第10-15页 |
| 1.1.1 人工合成混菌体系的设计与构建 | 第10-11页 |
| 1.1.2 混菌体系相互作用关系的解析 | 第11-15页 |
| 1.2 群体感应系统的概述及研究进展 | 第15-19页 |
| 1.2.1 群体感应系统的概述 | 第15-17页 |
| 1.2.2 群体感应系统的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.3 人工混菌体系的应用 | 第19-21页 |
| 1.3.1 同种属人工混菌体系的应用 | 第19-20页 |
| 1.3.2 多种属人工混菌体系的应用 | 第20-21页 |
| 1.4 本文的研究意义及主要内容 | 第21-24页 |
| 1.4.1 本文的研究意义 | 第21-22页 |
| 1.4.2 本文的主要内容 | 第22-24页 |
| 第2章 材料与方法 | 第24-38页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-27页 |
| 2.1.1 实验仪器及实验试剂 | 第24-26页 |
| 2.1.2 实验菌株及载体质粒 | 第26页 |
| 2.1.3 培养基及试剂的配置 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-33页 |
| 2.2.1 分子克隆操作方法 | 第27-31页 |
| 2.2.2 细胞发酵培养 | 第31-33页 |
| 2.3 分析检测 | 第33-38页 |
| 2.3.1 小分子代谢物的分析 | 第33-35页 |
| 2.3.2 发酵指标的测定 | 第35页 |
| 2.3.3 活菌密度的测定 | 第35-38页 |
| 第3章 两菌一步发酵体系的设计与构建 | 第38-60页 |
| 3.1 维生素C两菌一步发酵体系的设计 | 第39-45页 |
| 3.1.1 两菌一步发酵体系的设计思路 | 第39-40页 |
| 3.1.2 两菌一步发酵体系发酵罐水平的条件优化 | 第40-45页 |
| 3.2 维生素C两菌一步发酵体系的构建 | 第45-58页 |
| 3.2.1 两菌一步发酵体系的优化设计 | 第45-47页 |
| 3.2.2 单基因缺失菌株的构建 | 第47-50页 |
| 3.2.3 单基因缺失菌株的发酵验证 | 第50-55页 |
| 3.2.4 双基因缺失菌株的构建及验证 | 第55-58页 |
| 3.3 小结 | 第58-60页 |
| 第4章 两菌一步发酵体系相互作用关系的解析 | 第60-76页 |
| 4.1 两菌一步发酵体系胞内代谢物分析 | 第61-64页 |
| 4.1.1 胞内代谢物的主成分分析 | 第61-62页 |
| 4.1.2 代谢路径的分析 | 第62-64页 |
| 4.2 两菌一步发酵体系氨基酸代谢的变化 | 第64-68页 |
| 4.3 两菌一步发酵体系核苷酸类物质代谢的变化 | 第68-69页 |
| 4.4 两菌一步发酵体系脂肪酸代谢的变化 | 第69-70页 |
| 4.5 两菌一步发酵体系TCA循环相关代谢物的变化 | 第70-73页 |
| 4.6 小结 | 第73-76页 |
| 第5章 维生素C三菌一步发酵体系的设计与构建 | 第76-88页 |
| 5.1 维生素C三菌一步发酵体系的设计 | 第76-78页 |
| 5.2 维生素C三菌一步发酵体系的构建 | 第78-87页 |
| 5.2.1 一步菌群体感应程序性死亡基因模块的构建 | 第78-80页 |
| 5.2.2 一步菌群体感应程序性死亡基因模块的验证 | 第80-83页 |
| 5.2.3 一步菌群体感应程序性死亡基因模块的优化及发酵验证 | 第83-87页 |
| 5.3 小结 | 第87-88页 |
| 第6章 三菌一步发酵体系相互作用关系的解析 | 第88-98页 |
| 6.1 三菌一步发酵体系胞内代谢物的主成分分析 | 第88-89页 |
| 6.2 三菌一步发酵体系胞内代谢物随发酵过程的变化 | 第89-92页 |
| 6.2.1 代谢路径的分析 | 第89-90页 |
| 6.2.2 潜在生物标志物的分析 | 第90-92页 |
| 6.3 三菌一步发酵体系胞内代谢物对群体感应的响应 | 第92-96页 |
| 6.4 小结 | 第96-98页 |
| 第7章 结论与展望 | 第98-102页 |
| 7.1 结论 | 第98-99页 |
| 7.2 创新点 | 第99-100页 |
| 7.3 展望 | 第100-102页 |
| 参考文献 | 第102-118页 |
| 附录A | 第118-124页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第124-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
